Leica DM1000 User Manual [en, de, fr]

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Leica DM1000

Operating manual

Bedienungsanleitung

Mode d’emploi

MICROSYSTEMS

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Published September 2004 by/ Publiée en septembre 2004 par/ Herausgegeben September 2004 von:

Leica Microsystems Wetzlar GmbH Ernst-Leitz-Strasse D-35578 Wetzlar (Germany)

Responsible for contents/ Responsable du contenu rédactionnel/ Verantwortlich für den Inhalt: Dr. Jasna Röth, Peter Schmitt (Clinical Microscopy, Product Management) Holger Grasse (Safety Officer according to MPG §30/ Sicherheitsbeauftragter nach MPG §30/ Responsable de la sécurité conformément à la loi relative aux dispositifs médicaux, §30) In case of questions, please contact the hotline/ Pour toute question, contacter notre service d’assistance téléphonique/ Bei Fragen wenden Sie sich bitte an die Hotline:

Phone/Tel./Tél. +49 (0) 6441-2922 86 Fax +49 (0) 6441-2922 55 E-mail/Email/Courriel MQM-Hotline@leica-

microsystems.com

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Leica DM1000

Operating Manual

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Copyrights

All rights to this documentation are held by Leica Microsystems Wetzlar GmbH. Reproduction of text or illustrations (in whole or in part) by print, photocopy, microfilm or other method (including electronic systems) is not allowed without express written permission from Leica Microsystems Wetzlar GmbH.

The instructions contained in the following documentation reflect state-of-the-art technology and knowledge standards. We have compiled the texts and illustrations as accurately as possible. Nevertheless, no liability of any kind may be assumed for the accuracy of this manual’s contents. Still, we are always grateful for comments and suggestions regarding potential mistakes within this documentation.

The information in this manual is subject to modification at any time and without notification.

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Contents

1. Important Notes about this Manual ...... 6

2. Intended Purpose of the Microscope ... 7

3. Safety Notes ............................................... 8

3.1 General Safety Notes ............................... 8

3.2 Electrical Safety ........................................ 8

4. Overview of the Instrument .................... 10

5. Unpacking the Microscope .................... 14

6. Assembling the Microscope .................. 16

6.1 Stage ............................................................ 16

6.2 Condenser................................................... 18

6.3 Tube and Eyepieces .................................. 19

6.4 Objectives ................................................... 19

6.5 Light Source - Transmitted Light Axis ... 20

6.6 Components for

Fluorescence Applications...................... 21

6.6.1 Fluorescence Illuminator .............. 21

6.6.2 106 z Lamp Housing ........................ 21

6.7 Analyzer and Polarizer* .......................... 24

6.8 Lambda Plate Compensator .................... 24

6.9 Optional Accessories ............................... 25

6.10 Connection to the Power Supply ............ 27

7. Startup ......................................................... 28

7.1 Switching on the Microscope................. 28

7.2 Köhler Illumination .................................... 28

7.3 Checking Phase Contrast Rings ............. 29

7.4 Adjusting the Light Sources .................... 31

8. Operation .................................................... 35

8.1 Switching on............................................... 35

8.2 Stages and Object Displacement ........... 35

8.3 Focusing ...................................................... 36

8.4 Tubes........................................................37

8.5 Eyepieces .................................................... 38

8.6 Objectives ................................................... 39

8.7 Light Sources ............................................. 40

8.8 Aperture Diaphragm ................................. 40

8.9 Field Diaphragm ......................................... 41

9. Contrast Methods ...................................... 42

9.1 Transmitted Light ....................................... 42

9.1.1 Brightfield......................................... 43

9.1.2 Phase Contrast................................ 44

9.1.3 Darkfield ........................................... 44

9.1.4 Oblique Illumination ....................... 45

9.1.5 Polarization ...................................... 45

9.2 Fluorescence.............................................. 46

10. Measurements with the Microscope ... 47

10.1 Linear Measurements .............................. 47

10.2 Thickness Measurements ....................... 48

10.3 Differentiation of Gout / Pseudo Gout ... 49

11. Troubleshooting......................................... 51

12. Care of the Microscope ........................... 54

12.1 Dust Cover .................................................. 54

12.2 Cleaning....................................................... 54

12.3 Handling Acids and Bases ...................... 55

12.4 Changing Fuses.......................................... 55

13. Essential Wear and Spare Parts ............ 56

14. Retrofitting Components .......................... 57

14.1 Equipping the Condenser Disk ................ 57

15. Index ............................................................ 59

16. EU Declaration of Conformity ................. 60

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1. Important Notes about this Manual

Caution!

This operating manual is an essential component of the microscope, and must be read carefully before the microscope is assembled, put into operation or used.

Text symbols, pictograms and their meanings:

(1.2)

→

p.20

This operating manual contains important instructions and information for the operational safety and maintenance of the microscope and accessories. Therefore, it must be kept and taken care of.

Numbers in parentheses, such as "(1.2)", correspond to illustrations (in the example, Figure 1, Item 2).

Numbers with pointer arrows (for example → p.20), point to a certain page of this manual.

Caution! Special safety instructions within this manual are indicated with the triangle symbol shown here, and have a gray background.

Caution! The microscope and accessories can

be damaged when operated incorrectly.

Explanatory note.

Item not contained in all configurations.

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2. Intended Purpose of the Microscope

The Leica DM1000 microscope, to which this user manual belongs, is designed for biological routine and research applications. This includes the examination of samples taken from the human body with a view to provide information on physiological or pathological states or congenital abnormalities, or to determine the safety and compatibility with potential recipients, or to monitor therapeutic measures.

The above-named microscope complies with the Council Directive 98/79/EEC concerning in vitro diagnostics. It also conforms to the Council Directives 73/23/EEC concerning electrical apparatus and 89/336/EEC concerning electromagnetic compatibility for use in an industrial environment.

The manufacturer assumes no liability for damage caused by, or any risks arising from using the microscope for other purposes than those for which they are intended or not using them within the specifications of Leica Microsystems Wetzlar GmbH. In such cases the conformity declaration shall cease to be valid.

These (IVD) devices are not intended for use in the patient environment defined by DIN VDE 0100-710. Neither are they intended for combining with medical devices according to EN 60601-1. If a microscope is electrically connected to a medical device according to EN 60601-1, the requirements defined in EN 60601-1-1 shall apply.

Caution!

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3. Safety Notes

3.1 General Safety Notes

This safety class 1 device is constructed and tested in accordance with EN 61010-2-101:2002, EN 61010-1:2001, IEC 1010-1:2001, safety regulations for electrical measuring, control, and laboratory devices.

Caution!

In order to maintain this condition and to ensure safe operation, the user must follow the instructions and warnings contained in this operating manual.

Caution!

The devices and accessories described in this operating manual have been tested for safety and potential hazards. The responsible Leica affiliate or the main plant in Wetzlar, Germany must be consulted whenever the device is altered, modified or used in conjunction with non-Leica components that are outside of the scope of this manual.

3.2 Electrical Safety General Specifications Microscope

For indoor use only. Supply voltage: Frequency: Power input: Fuses: Ambient temperature: Relative humidity: Over voltage category: Pollution degree:

Caution!

The power plug may only be plugged into an outlet equipped with a grounding contact.

Do not interfere with the grounding function by using an extension cord without a ground wire. Any interruption of the ground wire inside or outside of the device, or release of the ground wire connection, can cause the device to become hazardous. Intentional ground interruption is not permitted!

90-250 V~ 50-60 Hz 90 W F 3,15 A 250 V 15-35°C max. 80% to 30°C II 2

Unauthorized alterations to the device or noncompliant use shall void all rights to any warranty claims!

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3. Safety Notes

Caution!

Never use any fuses as replacements other than those of the types and the current ratings listed here. Using patched fuses or bridging the fuse holder is not permitted. The use of incorrect fuses may result in a fire hazard.

Caution!

The microscope’s electrical accessory components are not protected against water. Water can cause electric shock.

Caution!

Protect the microscope from excessive temperature fluctuations. Such fluctuations can lead to the accumulation of condensation, which can damage the electrical and optical components. Ambient temperature: 15-35°C.

Caution!

Before exchanging the fuses or lamps, be absolutely certain to switch off the main power switch and remove the power cable.

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4. Overview of the Instrument

Specification Contrast Method

Transmitted Light Axis

Incident Light Axis

Tube

Leica DM1000

•Transmitted Light: Brightfield, Darkfield, Phase Contrast, Polarization

• Incident Light: Fluorescence

Integrated halogen illumination manual adjustment of

• Light Intensity

• Aperture Diaphragm

• Field Diaphragm (only with Koehler kit)

Incident light fluorescence illuminator for up to eyepiece field number 20 with

•Interchangeable slide with mount for 3 filter systems

•Adjusting lens for lamp

•Light trap for the suppression of extraneous light

• BG38 blue filter and shutter, switchable

optionally with

•Fixed or variable viewing angle

•Up to 3 switching positions

• one or two camera ports

• Ergotube with height-adjustable eye level and camera port

Magnification Changer (optional)

Objective Turret

X/Y Stage

• Manual

•Magnification steps: 1x; 1.5x; 2x

• Manual

• 5-fold for objectives with M25 thread

•With condenser holder

• Coaxial pinion optional telescopable

•Controls mountable on left or right

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4. Overview of the Instrument

Specification Condenser

Focusing

Leica DM1000

• CL/PH 0.90/1.25 OIL condenser with color coding

• CLP/PH 0.85 condenser for polarization

• Achr.apl. A 0.9 (P) condenser with swivelable condenser head

• UCL 0.90/1.25 OIL universal condenser UCLP 0.85 for polarization with 5-position light ring disk)

• UCL/P pol. universal condenser with interchangeable condenser head and condenser disk with 6 positions

•Focus wheel for coarse and fine focusing

•Height adjustment

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4. Overview of the Instrument

6 5

Fig. 1 Left side of the Leica DM1000 stand 1 Coarse and fine focusing 2 Condenser height adjustment 3 Brightness control 4 Field diaphragm 5 Aperture diaphragm 6 Condenser

12 3

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4. Overview of the Instrument

Fig. 2 Right side of the Leica DM1000 stand 1 Eyepiece 2 Eyepiece tube 3 Tube 4 Objective turret with objectives 5 Specimen stage with specimen holder

6 Integrated illumination

7 On/Off switch 8 Condenser height adjustment 9 Coarse and fine focusing 10 Coaxial pinion for x/y stage movement

678910

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5. Unpacking the Microscope

First, carefully remove all components from the transportation and packaging materials.

Note:

If at all possible, avoid touching the lens surfaces of the objectives. If fingerprints do appear on the glass surfaces, remove them with a soft leather or linen cloth. Even small traces of finger perspiration can damage the surfaces in a short time. See the chapter "Care of the Microscope"

p. 54, for additional instructions.

→

Caution!

Do not yet connect the microscope and peripherals to the power supply at this point!

Installation Location

Work with the microscope should be performed in a dust-free room, which is free of oil vapors and other chemical vapors, as well as extreme humidity. At the workplace, large temperature fluctuations, direct sunlight and vibrations should be avoided. These conditions can distort measurements and micrographic images.

Allowable ambient conditions Temperature 15-35°C Relative humidity maximum 80% up to 30°C

Microscopes in warm and warm-damp climatic zones require special care in order to prevent the build up of fungus. See the chapter "Care of the Microscope" → for additional instructions.

Caution!

Electrical components must be placed at least 10 cm away from the wall and away from flammable substances.

p. 54,

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Transport

For shipping or transporting the microscope and its accessory components, the original packaging should be used.

As a precaution to prevent damage from vibrations, the following components should be disassembled and packaged separately:

• Unscrew the objectives.

• Remove the condenser.

• Remove the coaxial pinion.

• Remove the lamp housings.

• Disassemble the burner of 106 z lamp housing.

• Remove all moving or loose parts.

5. Unpacking the Microscope

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6. Assembly

6. Assembling the Microscope

The microscope components are logically assembled in this order:

• Stage

• Condenser

•Fluorescence*

• Intermediate systems*

•Tube

• Eyepieces

• Objectives

• Lamp housings with light sources

• Polarization*

Only one commonly used screwdriver is necessary for assembly, which is included in the delivery package. The tool can be stored on a magnetic retainer on the underside of the stage at the right. When using intermediate systems and optical accessories, the sequence may vary. In this case, read Chapter "6.9 Optional Accessories" → p. 25.

6.1 Stage

Caution:

Before completing the stage, make sure no objectives are installed!

Specimen Holder

• Place the specimen holder on the stage and fasten it with the two screws (3.1).

Coaxial Pinion

Note:

The coaxial pinion can be mounted on the leftor right-hand side.

Fig. 3 Specimen stage with specimen holder 1 Lock screws for specimen holder

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• First, place the fine focus wheel on the side to which you intend to mount the coaxial pinion. The wheel is held in place magnetically (4.1). Ensure that the button snaps into place. Attach the other focus knob on the opposite side.

• Loosen the lock screw (5.1) at the front lefthand side of the stage.

• Slide the stage as far back as possible.

• Attach the coaxial pinion with the screw (6.1).

• Pull the stage forward and retighten the lock screw.

6. Assembly

Fig. 5 Underside of stage 1 Lock screw

Fig. 4 Focus wheel 1 Magnetic retainer for fine focus wheel

Fig. 6 Coaxial pinion installation 1 Mounting screw for coaxial pinion

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6. Assembly

6.2 Condenser

• If present, screw the condenser head into the condenser.

• Using the condenser height adjuster (9.3), turn the condenser holder (fig. 8) completely downward.

• Unscrew the clamping screw for the condenser (9.2) far enough so that the condenser can be inserted from the front.

• From the front, insert the condenser into the condenser holder as far as it will go. On the underside of the condenser, there is an orientation pin (7.1), which must be located in the guiding notch (8.1).

• Pull the condenser’s clamping screw (9.2) so that the condenser is locked in place.

Fig. 7 Underside of condenser(example CL/PH) 1 Orientation pin 2 Auxiliary condenser lens LS

Note:

The condenser must be centered before using the microscope.

Köhler illumination p. 28.

→

Fig. 8 Condenser holder 1 Guiding notch

Fig. 9 Condenser holder 1 Condenser centering 2 Clamping screw for condenser 3 Condenser height adjuster

2 1

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6. Assembly

6.3 Tube and Eyepieces

Note:

For fluorescence applications, install the fluorescence illuminator first → p. 21.

If available, the analyzer* (10.1) must be inserted into the stand. This requires that the guide key engages in the guide pin (10.2). To mount the analyzer, the analyzer mount TL* 20 mm or 60 mm can also be placed between stand and tube.

An intermediate tube pole* with a switchable analyzer (on/off) and Bertrand lens is also available as an option.

The tube is mounted to the stand either directly or with the use of intermediate modules.

• Loosen the clamping screw (11.1) on the stand.

• Insert the tube in the circular receptacle (dovetail ring).

• Retighten the clamping screw (11.1).

• The eyepieces are inserted into the eyepiece tubes on the tube.

6.4 Objectives

Always only use Leica objectives of tube length × (infinity)! The standard thread is M25. The objectives should be arranged so that the magnification increases when the objective nosepiece is rotated counter clockwise.

Attention:

Lower the specimen stage as far as possible before assembling the objectives. Close vacant threads in the nosepiece with dust protection caps!

Fig. 10 Analyzer mounting 1 Analyzer 2 Orientation pin and guiding notch 3 Clamping screw

Fig. 11 Fastening the tube 1 Clamping screw

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6. Assembly

6.5 Light Source for the Transmitted Light Axis

Caution!

Be sure that the lamp housing is disconnected from the power supply. Unplug the power plug and the power supply during assembly.

Caution!

Light sources pose a potential irradiation risk (glare, UV-radiation, IR-radiation). Therefore, lamps have to be operated in closed housings.

Replacing the Lamp of the Integrated Illumination

The transmitted light illumination with a lowvoltage tungsten halogen lamp (Fig. 12) is integrated in the base of the microscope and is accessible from the right-hand side.

• Remove the insert (12.2).

Caution!

The lamp may still be hot!

• Remove the lamp.

Caution!

Do not remove the new lamp’s dust cover until you have installed the lamp. Avoid fingerprints on the lamp.

• Insert the new lamp with the dust cover straight into the socket until it stops. Be sure that the lamp is inserted straight.

Fig. 12 Transmitted-light illumination in microscope base 1 Tungsten halogen lamp 2 Insert

• Remove the lamp’s dust cover.

• Replace the insert (12.2).

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6.6 Components for Fluorescence Applications

6.6.1 Fluorescence illuminator

6. Assembly

Caution!

The fluorescence illuminator is mounted in front of the tube. It is fastened in place with the side clamping screw (13.1).

6.6.2 106 z Lamp Housing

Caution!

Light sources pose a potential irradiation risk (glare, UV-radiation, IR-radiation). Therefore, lamps have to be operated in closed housings.

During assembly, always unplug the power supply unit of the 106 z lamp housing from its socket.

During assembly work on xenon burners, always wear the supplied protective gloves and face protection (Fig. 14) (risk of explosion).

Never touch the glass parts of the burner with bare hands. Never look directly into the beam path (blinding hazard).

Make sure to follow the instructions and safety notes of the lamp supplier. Before changing lamps allow at least 30 mins for cooling down!

Inserting the Ggas Discharge Lamps (Hg and Xe) into the 106z Lamp Housing

Hg and Xe lamps are powered by separate supply units. Read the separate instruction manual provided with these supply units.

Fig. 13 Assembly of fluorescence illuminator 1 Clamping screw

Fig. 14

Protective gloves and mask

This lamp housing is used with various gas discharge lamps.

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6. Assembly

The following gas discharge lamps may be used and require different supply units and lamp mounts (Fig. 16):

Type Typical Bulb Life*

50 W high-pressure mercury burner (alternating current) 100 hours. 100 W high-pressure mercury burner (direct current) 200 hours. 100 W high-pressure mercury burner (direct current, type 103 W/2) 300 hours. 75 W high-pressure xenon burner (direct current) 400 hours.

* Please regard the data sheets for the burners.

•To open the 106 z lamp housing, unscrew the fastening screws (15.8) on the cover.

• Remove the transport anchorage (red plastic rod in place of the burner) in the lamp mount. To do so, remove the lower clamp (16.1). Pull up the cooling element (16.3) and turn it to the side. Detach the lower clamp system (16.2) and remove the transport anchorage.

• Install the burner in reverse order.

Caution!

Fig. 15 106 z lamp housing (on the side, open) 1 Cover raised 2 Collector 3 Gas discharge lamp in mount 4 Reflector (mirror) 5, 6, 7 Adjusting screw for x-y reflector 8 Fastening screw for lamp mount 9 Socket for contact plug

Hg 50 Burner:

After installation, the labeling must be

upright. If a glass melt nipple is present (16a.4), position it by turning the burner so that the nipple does not come in the way of the beam path later, but instead is positioned

sideways.

Xe 75 Burner:

Remove the burner’s dust cover (16b.5) after you have installed the burner.

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6. Assembly

• Insert the lamp mount, with the burner installed, into the lamp housing and tighten it with the screws (15.8).

• Close the lamp housing and retighten the screws.

• Place the lamp housing in the incident light lamp housing receptacle (17.1) and fasten it with the clamping screw on the side.

• Connect the lamp housing to the external power supply.

Fig. 16 a-c Lamp mounts for gas discharge lamps 1 Upper clamping system 2 Lower clamping system 3 Cooling element 4 Nipple of the mercury 50 burner, 5 Dust cover of the mercury 75 burner

Fig. 17 Mounting the 106 z lamp housing 1 Lamp housing receptacle

Hg 50

Xe 75

Hg 100

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6. Assembly

6.7 Analyzer and Polarizer*

Analyzer

If the analyzer was inserted into the tube mount before the tube assembly: (→ p. 19), no additional assembly step is required. If an intermediate tube pole* or analyzer mount TL* is used:

• Remove the plug cap on the left side.

• Insert the analyzer into the receptacle until it latches in place.

Polarizer

• Raise the condenser to its upper stop position.

• Remove the DLF filter magazine from the base if present.

• Press the polarizer holder in place (Fig. 18).

• Push the polarizer with the labeled side

upward into the lower opening.

Alternative:

• Attach the polarizer holder to the underside of the condenser holder with the left clamp screw (19.1). Remove the flip-out blue filter if required.

• Push the polarizer with the labeled side

upward into the lower opening.

6.8 Lambda Plate Compensator*

• Raise the condenser to its upper stop position.

• Remove the DLF filter magazine from the base if present.

• Attach the lambda plate compensator to the base.

Fig. 18 Filter holder

with 2 positions

Fig. 19 Assembly of polarizer holder 1 Clamping screw

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6. Assembly

6.9 Optional Accessories Camera

A camera can be connected via an adapter.

• Attach the adapter to the top port of the tube and fasten it tightly with the side clamping screw.

• Screw on the camera.

Note:

The size of the camera chip and the mounting system (B-mount, C-mount, etc.) must be considered when choosing an adapter. See table.

Calculation of the magnification on the monitor The magnification M

on the monitor can be

calculated with the following formula or measured with a stage micrometer and a cm scale:

= Objective magnification x

factor of magnification changer*x TV adapter magnification x monitor diameter chip diameter of camera

Recorded picture diagonal in mm for 1 inch 2/3 inch 1/2 inch 1/3 inch camera camera camera camera

Without Zoom Magnification, Only for 1-Chip-Cameras:

C-mount adapter 1 x HC 16 11 8 6 C-mount adapter 0.63 x HC - 17.5 12.7 9.5 C-mount adapter 0.5 x HC - - 16 12 C-mount adapter 0.35 x HC - - - 17.1

With Zoom Magnification (Vario TV Adapter) for 1-3 Chip-Cameras:

C-mount, 0.32-1.6 x HC - - 19

-5 18-3.8

B-mount (ENG), 0.5-2.4 x HC (1/2-inch) - - 16-3.3 -

from zoom factor 0.42 x only!

Without Zoom Magnification, for 1-3 Chip-Cameras:

C-mount adapter 1 x - - 16 12 B-mount adapter 1 x - - 16 12 B-mount adapter 1.25 x - 17.5 - F-mount adapter 1 x - - 16 12 F-mount adapter 1.25 x - 17.5 - Plus (essential requirement): TV optics 0.5 x HC

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6. Assembly

Ergomodule

For raising the eye level of the tube opening, the 30 mm or 60 mm ergomodule may be used. It is fastened in place with the side clamping screw.

Ergolift

A base for the stand featuring adjuster wheels for the base’s height and angle is available to ensure an optimal working position.

Magnification Changer

Optionally, a magnification changer (fig. 20) can be used, which is manually operated. On the knurled ring, the following magnification factors can be set:

1x; 1.5x; 2x

Viewing Attachments

Viewing attachments featuring illuminated pointers are available for groups of up to 20 viewers. The support (21.3) must be aligned precisely. The fade-in arrow can be moved in x and y direction (move the lever vertically or pull out/ push in) (21.1) If this lever is rotated, the color of the arrow can be changed (red/yellow). Use the brightness control (21.2) to adjust the brightness of the arrow.

Fig. 20 Magnification

changer

Fig. 21 Viewing attachment 1 Movement of light pointer in x and y direction,

and switchover of color filter

2 Brightness control 3 Adjustment of arm support

The external power supply (illuminated arrow) is not illustrated.

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6. Assembly

Tracing Device

The tracing device L3/20 (fig. 22) allows an optical overlay of large objects (next to the microscope) on the microscope image. This makes it easy to draw specimens by tracing their outlines or superimposing scales.

6.10 Connection to the Power Supply

• After completing the assembly work, connect the stand to the power supply using the power cable supplied (fig. 23).

•When using the lamp housing or the external power supply unit, connect them to the power supply, too.

Fig. 22 Tracing device 1 Shutter

Fig. 23 Back of the stand 1 Power supply connection

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7. Start-up

7.1 Switching on the Microscope

•Switch on the microscope with the on/off switch (24.1).

Caution!

After turning on the gas discharge lamp, the burner must be immediately adjusted. Therefore, do not turn on the power supply unit yet. First, work in transmitted light in order to familiarize yourself with the microscope’s controls.

Fig. 24 1 On/Off switch 2 Focus wheel 3 Stage positioning

7.2 Köhler Illumination

The condenser is also pre-adjusted in the factory. However, it may be necessary to re-adjust the condenser in some cases. Therefore, check the condenser centering.

The following procedure is provided for the transmitted light brightfield illumination.

• If present click the condenser disk* into the BF position.

• If present pull the light ring slide* out of the condenser.

• Select an objective with moderate magnification (10x-20x). For condensers with movable condenser heads: Swing in the condenser top. (The condenser top is swung out for objective magnifications < 10x.)

• Insert the specimen into the stage’s specimen holder.

• Focus on the specimen using the focus wheel (24.2).

• Set the light intensity using the brightness control (25.2).

• Close the field diaphragm (25.3) until the edge of the diaphragm appears in the specimen plane (26a).

21 3

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7. Start-up

• Using the condenser height adjuster (25.1), adjust the condenser until the edge of the field diaphragm appears in sharp relief(26b).

• If the image does not appear in the middle of the field of view (26c), the condenser must be moved into the middle of the field of view with the help of the two centering bolts (25.4). The tool required for this purpose is magnetically attached to the underside of the stage.

• Open the field diaphragm just enough for it to disappear from the field of view (26d).

Note:

The condenser height adjustment depends on the thickness of the specimen. It may be adjusted for different specimens.

Fig. 25 1 Condenser height adjuster 2 Brightness control 3 Field diaphragm 4 Condenser centering

7.3 Checking Phase Contrast Rings

If your microscope is equipped for the use of phase contrast, the light rings that fit the objectives are built into the condenser. The light rings are already centered in the factory. However, the centering should be rechecked.

Note:

A light ring slide which is inserted into the side of the condenser is used for condensers without condenser disks. Centering is not required in this case.

Note:

When swivelling in a suitable objective for phase contrast, the corresponding light ring must be chosen. The objective engraving (e.g. PH 1) indicates the corresponding light ring (e.g. 1).

Fig. 26 Köhler Illumination a Field diaphragm not focused, not centered b Field diaphragm focused, but not centered c Field diaphragm

Diameter is too small, however

d Field diameter (light) = Field diameter (view)

(Köhler Illumination)

12 3

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7. Start-up

• In the place of an eyepiece, insert the focusing telescope (Fig. 27) into the observation tube.

•Swivel in the phase contrast objective with the lowest magnification.

• Focus on the specimen with the focus wheel.

• Focus the ring structure (29.a) by slightly loosening the clamping ring (27.2) and moving the eye lens (27.1).

• Retighten the clamping ring.

• Select the corresponding ring diaphragm (light ring) in the condenser.

• If the light ring and the phase ring are not shown as arranged in Fig. 29.c, the light ring must be centered.

• Insert the centering screws into the openings provided at the rear of the condenser (28.1).

•Turn the centering screws until the dark ring (phase ring in the objective) is congruent with the slightly narrower bright ring (light ring in condenser) (29 c).

• Repeat the process for all other light rings.

• Remove the centering keys after the centering procedure.

Fig. 28 Light ring centering (i.e.: condenser UCL/P) 1 Centering keys

Fig. 27 Focusing telescope 1 Adjustable eye lens 2 Clamping ring for fixing the focus position

Fig. 29 Phase contrast centering procedure

PH=phase contrast ring, LR=light ring

a Condenser in bright field (BF) position b Condenser in phase contrast (PH) position

Light ring (LR) not centered

c Light ring and phase ring centered

ab c

PH LR

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7. Start-up

7.4 Adjusting the Light Sources

Centering is only required when using the 106 z lamp housing.

•When a supply unit is used, it is turned on first.

Caution!

Never look directly into the beam path!

Caution!

Light sources pose a potential irradiation risk (glare, UV-radiation, IR-radiation).

For the 106 z lamp housing, the direct arc image (for gas discharge lamps) and its mirror image are focused separately and adjusted to each other.

•Move the filter system or reflector into the light path.

• Open the shutter and remove any diffusing screens* from the light path.

• Put a piece of paper on the specimen stage and roughly focus the surface with a dry objective of low to medium magnification.

• Set the field and aperture diaphragms roughly at the center position.

• With a felt or ballpoint pen, make a marking at any position on the paper and slide it into the small illuminated field.

•Turn a vacant nosepiece position into the light path or remove the objective.

The light source will then be imaged onto the paper. While observing the light source, the lamp is adjusted as follows.

Fig. 30 106 z lamp housing 1 Lamp height adjustment 2,4 Mirror image height and side adjustment 3 Focusing the reflector 5 Lamp side adjustment 6 Collector (focusing of the lamp image)

516

Page 32

7. Start-up

Centering the Hg 50 W Mercury Lamp

• In the adjustment window, you see the direct arc image and the mirror image, which in most cases are not aligned.

• Focus the direct image with the collector (30.6).

• Use the adjusting buttons on the rear side of the lamp housing (30.2, 30.4) to pivot the arc’s mirror image to the side or completely out of the beam path. The lamp filament’s focused image remains visible (Fig. 31).

• Use the adjusting buttons (30.1) and (30.5) to place the direct arc image to the right or left of an imaginary center line of the centering plane (Fig. 32).

• Then pivot the arc’s mirror image with the adjusting knobs (30.2 and 4) and focus it using the reflector (30.3).

• Use the adjusting knobs (30.2 and 4) to orient the mirror image symmetrically to the direct image (Fig. 33).

Fig. 31 Direct arc image focused but decentered

(in reality, the image is less focused)

Fig. 32 Direct arc image in target position

(in reality, the image is less focused)

• Defocus the image with the collector knob (30.6) until the arc image and mirror image are no longer recognizable and the image is homogeneously illuminated.

Fig. 33 Direct arc image and mirror image in target

position (in reality, the image is less focused)

Page 33

7. Start-up

Centering the Hg 100 W and Xe 75 W Mercury Lamps

• On the paper, you see the direct arc image and the mirror image, which in most cases are not aligned.

• Focus the direct image with the collector (30.6).

• Use the adjusting buttons to pivot the arc’s mirror image on the rear side of the lamp housing (30.2,30.4) to the side or completely out of the beam path. The arc’s focused image remains visible (Fig. 34).

• Use the adjusting buttons (30.1 and 5) to place the direct arc image in the middle of the centering plane, whereby the bright tip of the arc, the focal spot, should lie slightly outside the center (Fig. 35).

• Then pivot the arc’s mirror image with the adjusting knobs (30.2) and (30.4) and focus it using the reflector (30.3).

Fig. 34 Direct arc image focused but not centered

(in reality, the image is less focused)

Fig. 35 Direct arc image in target position

(in reality, the image is less focused)

• Use the adjusting knobs (30.2 and 4) to orient the mirror image symmetrically to the direct image (Fig. 36). The V-shaped irradiation of the direct image and mirror image arcs can be superimposed.

Caution!

The bright tips of the arcs, the focal spots, must never be projected onto each other, as this results in a danger of explosion by overheating.

Fig. 36 Direct arc image and mirror image in target

position (in reality, the image is less focused)

Page 34

7. Start-up

Caution:

In older lamps, the structure of the arc is no longer clearly recognizable. The image is then more like that of a HG 50 lamp. The image and mirror image can no longer be superimposed exactly. In this case, align both images.

• Using the collector, defocus the image with the knob (30.6) until the arc image and mirror image are no longer recognizable and the image is homogeneously illuminated.

Page 35

8. Operation

8.1 Switching on

When using a gas discharge lamp, the external supply unit must be turned on separately.

Switch on the microscope at the on/off switch (37.1).

Fig. 37 1 On/off switch 2 Coarse focusing 3 Fine focusing 4 Stage positioning 5 Stage lock screw 6 Coaxial pinion mounting screw

8.2 Stages and Object Displacement

Lengthening the Coaxial Pinion

• For lengthening, pull the lower grip (38b.1) downward. Repeat with the upper grip (38b.2).

Torque Adjustment

The torque for x and y can be individually adjusted using two knurled rings (38b.2,38b.4).

Fig. 38a Standard coaxial pinion, b coaxial pinion with height and torque adjustment

1 Object displacement (Y-direction) 2 To rque adjuster (X-direction) 3 Object displacement (X-direction)

4 To rque adjuster (Y-direction)

3 2 1

1 4

Page 36

8. Operation

Right-/Left-hand Operation

The coaxial pinion can be attached to either side of the stage (also see Assembly, p. 16f). To change the side, follow these steps:

• Loosen the lockscrew (37.5) at the bottom lefthand side of the stage. The necessary tool is attached to the bottom of the stage on the right-hand side.

Caution:

The condenser must be lowered!

• Slide the stage all the way back.

• Release the screw (37.6) on the coaxial pinion and pull the pinion out.

• Place the fine focus wheel (37.3) on the side to which you intend to mount the coaxial pinion. The wheel is held in place magnetically. Ensure that the button snaps into place. Attach the other focus knob on the opposite side.

8.3 Focusing Coarse and Fine Focusing

Coarse and fine focusing wheels are located on either side of the stand (Fig. 37 and 39).

The special form of the flat fine focus wheel (Fig. 37.3) lets users enclose the coaxial pinion in their hands while operating the fine focus with one finger. The flat wheel should therefore be mounted onto the appropriate side. See right/left-hand operation of the stage.

Height Adjustment of the Focusing Wheels

• Defocus the image by moving the stage down with a full turn of the coarse focus wheel (37.2, 39.1).

• Grasp the right-hand and left-hand focus knobs at the same time and press the knobs gently upward or downward into the desired position.

• Refocus the image.

• Fasten the coaxial pinion to the other side of the stage by retightening the appropriate screw.

• Return the stage to the starting position and retighten the lockscrew.

• Readjust the condenser.

Fig. 39 Focus knob with scale 1 Coarse focusing 2 Fine focusing

1 2

Page 37

8. Operation

8.4 Tubes

Note:

Close any unused tube openings, as otherwise stray light can interfere with observation.

Adjusting the Viewing Distance

• Adjust the viewing distance of the eyepieces so that a congruent total image is seen (Fig. 40).

Adjusting the Viewing Angle

• For the HC LVB 0/4/4 and HC -/0/4 ergonomy tubes, the viewing angle can be adjusted by tilting the binocular viewer. Ergotube (long, swivelable): 0° - 35° Ergotube (short, swivelable): 7.5° - 32.5°

• For the AET22 and EDT22 ergotubes, the viewing angle can be adjusted by tilting the binocular viewer in the range of 5° - 32° (Fig. 41).

Adjusting the Eyepiece Section to the Arm Length

• On the AET22 tube, the eyepieces can be extended up to 30 mm (Fig. 41).

Beam Splitting in Photo Tubes

EDT22 tube: The beam splitting between the observation and documentation outputs has a definite presetting (50:50).

BDT25+ tube: The beam splitting is set manually by pulling out a control bar.

Control Bar Observation Photo VIS 100% 0% 50/50 150% 50% PHOTO 110% 100%

Fig. 40 Tube setting

↔ Personal eyebase settings

1 Scale (mm), 2 Intermediate module*, in illustration: Ergo module

↔

Fig. 41 With AET22 tube individual adjustments

Page 38

8. Operation

HC L 2TU tube: The beam splitting is set manually by pulling out a control bar.

Control Bar Observation Photo VIS 100% 0% PHOTO 110% 100%

Fig. 42 Tube range HC L 1 Binocular observation tube HC LB 0/3/4 2 Ergonomy tube HC LVB 0/4/4, binocular,

viewing angle 0-35° additional ergotube (short) HC -/0/4, swivelable 7.5°-32.5°

3 Trinocular tube H L1T 4/5/7, with fixed beamsplitter

(50%/50%)

4 HC L1VT 0/4/4 like 3,

but with adjustable viewing angle of 0-35°

5 Trinocular tube with 3 switching positions HC L3TP 4/5/7 6 Photo adapter, with 2 exits (50%/50%) 7 Photo TV exit

8.5 Eyepieces

Note:

The eyepiece’s aperture protector must be removed or folded back during microscopy while wearing eyeglasses. We recommend

that users remove their glasses

with bifocal or progressive-addition lenses when working with the microscope.

• For the adjustable tubes with documentation output, choose the 100% VIS position.

Eyepieces with Inlaid Reticle

• Focus the reticle by adjusting the eyelens.

• Focus on the object through this eyepiece.

• Then, close that eye and focus on the object

by adjusting only the second ocular.

Correction for Vision Problems

•With your right eye, look through the right

eyepiece and bring the specimen into sharp focus.

• Then, with your left eye, view the same

specimen and rotate the left eyepiece tube until the object is brought into sharp focus. Do not use the focus dial.

345

Page 39

8.6 Objectives Changing Objectives

8. Operation

Caution!

The objective must be moved manually into the light path. Be sure that the nosepiece turret locks into place.

When you rotate the objective into position, the settings for

• Field diaphragm → p. 41

• Aperture diaphragm → p. 40

• Light intensity → p. 40

should be checked.

• For immersion objectives use the appropriate immersion medium. OIL: only use optical immersion oil

according to DIN/ISO standards.

Cleaning → p. 54. W: Water immersion. IMM: Universal objective for water, glycerol,

oil immersion.

Follow safety instructions for immersion oil!

Note:

For lockable immersion objectives lock these by pushing the front part upwards until it stops (approx. 2 mm). Then, after a gentle turning motion to the right, the objective is locked (Fig. 44). For objectives with corrective mounts turn the knurl to adjust the objective to the thickness of the cover glass.

Fig. 43 Immersion objective (released) Fig. 44 Immersion objective (locked)

↔

Page 40

8. Operation

8.7 Light sources Transmitted light

• Adjust the brightness with the dial (45.1).

The numbers on the dial are not absolute values, but are intended to enable reproducible settings. The maximum value is about 12 V, the marking point of a color temperature of

imately 3200 K.

approx

Note:

The

HI PLAN xx SL and

HI PLAN CY xx SL (Synchronized Light) objective lines permit objectives to be changed without adjusting the light intensity.

Fluorescence

•Switch on the lamp at the external power unit.

8.8 Aperture Diaphragm

The aperture diaphragm (46.3) determines the resolution, depth of field and contast of the microscope image. The best resolution is obtained when the apertures of the objective and the condenser are roughly the same.

When the aperture diaphragm is stopped down to be smaller than the objective aperture, resolving power is reduced, but the contrast is enhanced. A noticeable reduction in the resolving power is observed when the aperture diaphragm is stopped down to less than 0.6x of the objective aperture and should be avoided where possible. In polarization microscopy, stopping down the aperture diaphragm generally results in more intense colors.

The aperture diaphragm is set according to the viewer’s subjective impression of the image, the scale on the dial is just to allow reproducible settings and does not represent absolute aperture values.

Caution!

Keep the lamphousing at least 10 cm away from the wall, curtains, wallpaper, books and other combustible objects!

Fire Hazard!

Please read the separate documentation for the supply unit.

Fig. 45 1 Brightness control

Page 41

Color-coded Condenser

The color markings on the condenser (46.2) correspond to the color rings of the objectives. When changing objectives, a suitable aperture diaphragm setting can be found by setting it to the matching color marking (corresponds to 2/3 of the objective-side aperture).

Fig. 46 CL/PH condenser 1 Slot for light rings, etc. 2 Color coding

3 Aperture diaphragm 4 Filter holder 5 Field diaphragm

8. Operation

Attention:

The aperture diaphragm in the illumination light path is not for setting the image brightness. Only

the rotary brightness adjustment knob or the neutral density filter should be used for this.

An aperture diaphragm in the objective is normally fully opened. The reduction in image brightness caused by stopping down results in:

Greater depth of field Less coverglass sensitivity Suitability for darkfield Change in contrast

8.9 Field diaphragm

The field diaphragm (46.5) protects the specimen from unnecessary warming and keeps all light not required for image formation away from the object to enable greater contrast. It is therefore only opened just wide enough to illuminate the viewed or photographed object field. A change in magnification therefore always necessitates matching of the field diaphragm.

1 2

Page 42

9. Contrast Methods

9.1 Transmitted Light Objective Magnification 2.5 x*

The CL/PH and CLP/PH condensers can be used alone starting at 4x magnification. When using a diffuser slider*, 2.5x magnification is also possible; not when using polarization, however.

The UCL and UCLP condensers can also be used alone starting at 4x magnification. When using an adapter lens* (in the condenser disk), 2.5x magnification is also possible. Before using the adapter lens, set Köhler illumination (→ p. 31) with 4x or 10x objective. Switch over to objective 2.5x, engage the lens, open the aperture diaphragm as far as the stop and narrow the field diaphragm. In case of arc-shaped vignetting, center the lens: insert both centering keys into the condenser at an angle from the back and adjust until the asymmetrical vignetting disappears. Remove the centering keys and open the field diaphragm. The lens can only be used up to an objective magnification of max. 20x. Exact Köhler illumination can no longer be obtained!

The Achr.Apl.0.9 (P) condenser can be used alone starting at 4x magnification. With the condenser head swung out, 2.5x objective magnification is possible without a diffuser; with the head swung in, the diffuser must be in place (max. eyepiece field number 22).

Magnifications of 1.6x and 2.5x are also possible with the CL/PH or CLP/PH, UCL or UCLP condensers if the condenser is removed completely. The field diaphragm then takes over the function of the aperture diaphragm.

Note:

If the microscope is equipped for polarization, the analyzer and polarizer as well as the lambda plate compensator must be removed or swung out when using other contrast methods.

Page 43

9.1.1 Brightfield

• If present: click the condenser disk* into the

BF position.

• If present: pull the light ring slide* out of the

condenser.

• If present: switch the fluorescence illuminator

into an empty position or filter system A.

9. Contrast Methods

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

•Movable condenser heads: The condenser top is swung out for objective magnifications < 10x.

• Bring the image into focus using the focus dial and set the brightness.

• For an optimal field diaphragm setting, check the Köhler illumination (→

p. 31).

• Use suitable transmitted-light filters as applicable (Fig. 47).

Fig. 47 Filter holders

DLF filter magazine for attachment to microscope base

Filter holder with 2 positions or 1 position for attachment to microscope base

Filter holder for screw attachment on condenser

Page 44

9. Contrast Methods

9.1.2 Phase Contrast

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place. Objectives that are suitable for phase contrast are engraved with PH.

• Bring the image into focus using the focus dial and set the brightness.

• For an optimal field diaphragm setting, check the Köhler illumination (→

• Open the aperture diaphragm completely (position PH).

Condensers UCL/UCLP and UCA/P:

• Set the light ring corresponding to the objective on the condenser disk. Example: Light ring 1 belongs to the objective with the engraving PH 1. Condensers CL/PH, CLP/PH and APL. ACHR.0.9 (P): Use the light ring slide.

p. 2831

9.1.3 Darkfield

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

• Bring the image into focus using the focus dial and set the brightness.

Condenser UCL/P:

• Click the condenser disk into the BF position. Condensers CL/PH, CLP/PH und APL. ACHR.0.9 (P): Pull out the DF light ring slide as far as the stop. Check the Köhler illumination (→

• Open the aperture diaphragm completely (position PH).

Condenser UCL/P:

• Click the condenser disk into the DF position. Condensers CL/PH, CLP/PH und APL. ACHR.0.9 (P): Insert the DF light ring slide as far as the stop.

p. 28).

Note:

Condensers UCL/UCLP and UCA/P: Light rings must be centered (→

p. 29).

Note:

Condensers UCL/UCLP and UCA/P: The DF light ring must be centered (→

Special dark field condensers are available for the DM1000 (Fig. 61). The application potential of the DF condensers depends on the aperture of the objective in use. For objectives with built-in iris diaphragm, the aperture can be adapted.

DF condenser max. objective aperture

D 0.80 - 0.95 0.75 D 1.20 - 1.44 OIL 1.10

p. 29).

Page 45

9. Contrast Methods

9.1.4 Oblique Illumination

• First adjust transmitted light darkfield.

•To obtain a relief-like contrast: Condenser UCA/P: Rotate condenser disk slightly out of the DF position. Condensers CL/PH, CLP/PH und APL. ACHR.0.9 (P): Push DF slide in part way out of the DF position.

9.1.5 Polarization

•Swing the lambda plate of the lambda plate compensator out if necessary.

• Insert a specimen and rotate an appropriate objective into place.

• Bring the image into focus and set the Köhler illumination (→

• Depending on the equipment, the analyzer may already have been inserted into the tube mount during the assembly. Alternative: If the analyzer mount TL* is used: Insert the analyzer as far as the clickstop into the microscope stand. The engraving λ must be on the underside. When using the Pol intermediate tube*: Switch on the analyzer.

p. 28).

Attention!

Always use the polarizer with the labelled side upward, as otherwise the integrated heat protection filter is ineffective and the special polarizer will become useless (discoloring!).

• Bring the polarizer and analyzer into cross position until they reach maximum darkness.

• Remove the object or find an empty area of

the specimen.

• Push the analyzer into the stand as far as

the 2nd clickstop or switch on the module.

• Remove compensators from the light path.

• Rotate the polarizer until you observe the

maximum extinction position in the eyepiece (fig 48).

• Fix the cross position thus determined with

the clamping screw.

Fig. 48

Crossing the polarizers when observing through a focusing telescope or Bertrand lens, high-aperture Pol objective a exactly crossed, b not exactly crossed Pos. a cannot be set if there is strain in the condenser or objective, Pos. b is adequate for polarization contrast.

• Push the polarizer with the labelled side upward into the lower opening.

Page 46

9. Contrast Methods

• If necessary: Insert the λ or λ/4 compensator into the filter holder integrated in the condenser holder and rotate to the left, roughly as far as the stop. CLP/PH condenser: Insert the λ or λ/4 compensator into the slot on the side of the condenser. Condensers UCLP and UCA/P: Rotate the condenser disk into position λ or λ/4. Alternative: 4x20 mm compensators can be pushed into the compensator slit.

9.2 Fluorescence

• Insert a suitable specimen and rotate an appropriate objective into place.

• Focus the image initially in transmitted light if appropriate.

•Switch on the incident light source at the external power unit.

• Open the shutter.

• Select an appropriate fluorescence filter cube.

•Switch magnification changer*, if present, to factor 1x.

• Disengage the BG 38 filter if there is no disturbing red background. Always engage the filter for photography, however.

• Open the aperture diaphragm.

Fig. 49 Leica DM1000 with

Fluorescence illuminator and 106z lamphousing

• Open the field diaphragm until the whole field of view is just illuminated. If necessary center the field diaphragm.

Page 47

10. Measurements with the Microscope

10.1 Linear Measurements

The following are required for linear measurements:

- Graticule with scale division in eyepiece or HC FSA 25 PE tube with diapositive overlay device or a digital linear measuring eyepiece

- Stage micrometer for calibration.

(→ Fig. 50, p. 48)

Micrometer Value

The micrometer value of the objective-eyepiece combination used must be known before the measurement, i.e. the distance in the specimen that corresponds to the length of a division on the graticule used.

Calibration:

• Align the stage micrometer and the graticule parallel to each other by rotating the eyepiece and adjust the zero marks of both scales to exactly the same height.

• Read how many scale divisions of the stage micrometer correpond to how many on the microscope scale (graticule).

Notes:

If using a magnification changer: Remember to take the additional magnification value into consideration! We strongly recommend you calibrate each objective separately instead of extrapolating the micrometer values of the other objectives from the calibration of one objective.

Measurement errors may occur if the eyepiece is not pushed into the tube as far as the stop.

Particularly large object structures can also be measured on the stage with the verniers (0.1 mm); the distance to be measured could be calculated from a combined x and y measurement.

• Divide the two values. The result is the micrometer value for the total magnification that has just been used.

Example: If 1.220 mm of the stage micrometer corresponds to 50 divisions of the measurement scale, the micrometer value is 1.220:50 = 0.0244 mm = 24.4 µm. For extremely low objective magnifications it may be that only part of the measurement scale can be used for calibration.

Page 48

10. Measurements with the Microscope

10.2 Thickness Measurements

In principle, thickness measurements can be carried out if both the upper and the lower surface of the object can be clearly focused. The difference in stage height setting (fine focus knob: distance between two divisions = ca. 1 µm) gives a value for transmitted light objects that is falsified by the refractive index of the object (which has been „transfocused“) and perhaps immersion oil. The true thickness of the object detail measured in transmitted light is given by the vertical stage movement (focusing difference) d’ and the refractive indices n object and n

of the medium between the

of the

coverglass and the objective (air = 1).

d = d'

Example: The upper and lower surfaces of a thin polished specimen have been focused with a dry objective (ni = 1.0), scale readings of the mechanical fine drive (division spacing = 1 µm):

9.0 and 27.0.

Therefore d’ = 18 x 1 = 18 µm. The refractive index of the object detail was taken to be n

= 1.5.

Thickness d = 18 x 1 x 1.5 = 27 µm.

Object Marker

The object marker is screwed in stead of an objective. When rotated, a diamond is lowered onto the coverglass or object surface, where circles of variable radii can be scribed to mark objects.

Fig. 50

Scale division of the graticule in the eyepiece (left) and image of the stage micrometer (right)

Page 49

10. Measurements with the Microscope

10.3 Differentiation of Gout / Pseudo Gout

The use of the lambda plate compensator is a prerequisite for this test. Assembly → p. 24.

Orienting the Lambda Plate Compensator

• Rotate the lambda plate compensator out of light path (fig. 51).

• Bring the lambda plate compensator and analyzer into cross position until they reach maximum darkness (polarization → p. 45).

• Fix the cross position thus determined with the clamping screw at the side (51.2).

•Swing in the lambda plate again.

Fig. 51 Lambda plate compensator swung out 1 Orientation handle 2 Clamping screw

The following section explains the basic procedure for gout/pseudo gout differentiation. This test is made possible due to the negative birefringence of urates and positive birefringence of pyrophosphates. Both gout (monosodium urate) and pseudo gout (calcium pyrophosphate) crystals tend to be needle shaped. However, many crystals may be broken and/or irregular. To do the test, it is necessary to find at least one intact crystal orientated NorthSouth (i.e., vertically) and one East-West (horizontally) in the field of view.

Procedure

To insure the test is being done correctly, a slide of known monosodium urate crystals should be used initially.

• Use of a 40x objective is recommended.

•Swing the lambda plate out of the path of light (fig. 51).

• Place the slide on the stage and bring crystals into a sharp focus. The needle shaped crystals will appear white regardless of orientation.

•Swing in the lambda plate and put the orientation handle (51.1) into it’s extreme left position. Crystals with a long dimension in the N/S direction should appear yellow and the E/W direction blue (fig. 52).

90°

Page 50

10. Measurements with the Microscope

•Move the orientation handle to its extreme right position. Now the N/S crystals should be blue, and E/W yellow (fig. 52).

• Be sure to test crystals with the orientation handle in each position to insure positive identification.

Fig. 52 Identification of gout

Test for Gout

N/S crystals

yellow

E/W crystals

blue

The following is the procedure for identification of pseudo gout:

The test for pseudo gout is done identically to the test for gout. However, the color change is opposite that of Gout. That is, with the handle at the left extreme, N/S crystals are blue and E/W crystals are yellow, and vice versa with the level at the right side (fig. 53).

Fig. 53 Identification of pseudo gout

Test for Pseudo Gout

N/S crystals

blue

E/W crystals

yellow

Handle

left

N/S crystals

blue

E/W crystals

yellow

Handle

right

Handle

left

N/S crystals

yellow

E/W crystals

blue

Handle

right

Page 51

11. Trouble shooting

Problem

Stand

The microscope does not respond.

Illumination

The image is completely dark.

Cause/Remedy

Make sure that voltage is available. Make sure that the stand is connected to the

power supply.

Check the cable connections. Check whether the fuse is defective and

replace it if necessary (→

p. 55).

Transmitted light:

Ensure that the lamp in the integrated

transmitted light illumination is not defective. Lamp replacement →

p. 20

Fluorescence:

Open the shutter (→ Make sure that the lamps are connected to

p. 46).

the power supply and that they are not defective Lamp replacement →

Inform Leica Service and have the supply unit

p. 21ff

fuse checked.

The image is unevenly or not uniformly illuminated.

The illumination "flickers."

Remove all unneeded filters from the light

path.

Center the lamp (106 z lamp housing)

p. 31ff).

(→

Replace the old lamp (→

Be sure that there is no loose connection at

p. 20ff).

the power supply.

Replace the old lamp (→

p. 20ff).

Page 52

11. Trouble shooting

Problem

Fluorescence: The lamp does not illuminate immediately upon being switched on.

Brightfield

The specimen can not be brought into focus.

Darkfield

No definite DF contrast is possible.

Cause/Remedy

The external power supply must be switched

on repeatedly.

Hot Hg lamps should cool down before

switching on again.

Use the correct immersion medium. Lay the specimen with the cover glass to-

wards the top.

Make sure that the cover glass thickness is

correct and that it suits the indication on the objective.

Be sure that a DF objective is being used. The objective aperture setting is too high

(maximum 0.75/1.10). If necessary, reduce the objective aperture using the iris diaphragm on the objective.

Check the condenser centering. Open the aperture diaphragm completely.

The image is unevenly or not uniformly illuminated.

Undesirable stray light.

The magnification is too weak. Use a higher

magnification.

Clean the specimen and neighboring lenses

p. 54).

(→

Page 53

11. Trouble shooting

Problem

Phase Contrast

No phase contrast is possible.

Polarization

No polarization contrast is possible.

Cause/Remedy

The specimen is too thick, too thin or too

brightly stained.

Refractive index of mounting medium and

specimen is identical so that there is no phase jump.

The cover glass is not placed evenly. Check the right light ring (→ p. 44). Check the centering of the light rings

(→ p. 29).

Check the condenser centering. Open the aperture diaphragm completely.

Bring the polarizer and analyzer into cross po-

sition until they reach maximum darkness (without specimen) (→ p. 45).

Fluorescence

The image is completely dark (no fluorescence).

The fluorescence is too weak.

Open the shutter (→ Check the antigen-antibody combination. Insert a new lamp (→

Center the lamp (→ Insert a new lamp (→

p. 46).

p. 21ff).

p. 31ff).

p. 21ff).

Page 54

12. Care of the Microscope

12.2 Cleaning

Caution!

Unplug the power supply before performing cleaning and maintenance work! Protect electrical components from moisture!

Microscopes in warm and warm-damp climatic zones require special care in order to prevent fungus contamination. The microscope should be cleaned after each use, and the microscope optics should be kept

extremely clean.

12.1 Dust Cover

Note:

To protect against dust, cover the microscope and accessories with the dust cover after each use.

Caution!

Let lamps cool down before covering the stand with a dust cover. The dust cover is not heat-resistant. In addition, condensation may occur.

Caution:

Residual fiber and dust can create unwanted background fluorescence.

Cleaning Coated Parts

Dust and loose dirt particles can be removed with a soft brush or lint-free cotton cloth.

Clinging dirt can be cleaned with all commercially available water solutions, benzine or alcohol. For cleaning coated parts, use a linen or leather cloth that is moistened with one of these substances.

Caution:

Acetone, xylene or nitro-containing thinner can harm the microscope and thus may not be used.

Test clean solutions of unknown composition first on a less visible area of the unit. Be sure that coated or plastic surfaces do not become matted or etched.

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12. Care of the Microscope

Cleaning Glass Surfaces

Remove dust on glass surfaces with a fine, dry and lint-free brush, or by blowing with a blow bag or vacuum suction.

Carefully remove stubborn dirt on glass surfaces with a clean cloth moistened with distilled water. If the dirt still cannot be removed, use pure alcohol, chloroform or benzine.

Cleaning Objectives

Caution!

The objective may not be unscrewed during cleaning. If damage appears on inner surfaces, the objectives must be sent to your Leica dealer for repair. We also advise against cleaning the inside surfaces of the eyepieces.

The front lenses of objectives are cleaned as described under "Cleaning Glass Surfaces". The upper lens is cleaned by being blown off with a pneumatic pump.

Removing Immersion Oil

Caution!

Follow safety instructions for immersion oil!

First, wipe off the immersion oil with a clean cotton cloth, and then re-wipe the surface several times with ethyl alcohol.

12.3 Handling Acids and Bases

For examinations using acids or other aggressive chemicals, particular caution must be taken.

Caution:

Never allow the optics and mechanical parts to come into con-tact with these chemicals.

12.4 Changing Fuses

The fuse module (fig. 54) at the back of the stand can be removed with a sharp object. Fuse data→ p. 8 Order no.→ p. 56

Fig. 54

Fuse module

Caution!

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13. Essential Wear and Spare Parts

Order No. Material No. Name Used for

Replacement Lamp 11 500 319 Halogen lamp 12 V 30 W integrated illumination 11 500 974 Halogen lamp 12 V 100 W 107/2 lamp housing 11 500 137 High-pressure mercury burner 50 W 106 z lamp housing 11 500 138 High-pressure mercury burner 100 W 106z lamp housing 11 500 321 High-pressure mercury burner 100 W 106z lamp housing

11 500 139 High-pressure xenon burner 75 W 106 z lamp housing

Screw cap for unused objective receptacles 020-422.570-000 Screw cap M 25 objective turret

Replacement eyecup (diaphragm protection) for HC PLAN eyepiece 021-500.017-005 HC PLAN eyecup 10x/25 eyepiece 021-264.520-018 HC PLAN eyecup 10x/22 eyepiece 021-264.520-018 HC PLAN eyecup 10x/20 eyepiece

Immersion Oil conforming to DIN/ISO standards, fluorescence-free 11 513 787 110 ml OIL and IMM objectives 11 513 522 100 ml and oil condenser heads 11 513 788 500 ml

(103 W/2)

Fuses 11 826 365 F 3,15 A 250 V Fuse for microscope stand

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14. Retrofitting Components

14.1 Equipping the Condenser Disk

•Turn the stage upwards and lower the condenser.

• Remove the condenser by loosening the condenser’s clamping screw.

Condenser UCL/UCLP

• Remove out the screw (55.1) completely.

•Turn back the centering screws until the light rings, λ - and λ/4 - compensator* and lens*

2.5x can be inserted. The largest hole is for brightfield observation (= BF), the slightly smaller ones are for light rings, λ - and λ/4 - compensator or lens* 2.5x.

Fig. 55 Condenser UCL 1 Fixing screw for condenser disk

Notes:

If you use a smaller hole for brightfield, the maximum illumination aperture cannot be used.

The lettering (e.g. DF, PH 1 ....., λ) must point

upward, the λ or λ/4 compensators must be inserted with the correct orientation: The notch must point towards the center of the disk! The lettering of the components should

the marking at the opposite position (outer

correspond

edge of the disk).

•Tighten the centering screws until the components are roughly in the center of the holes.

Fig. 56 UCL condenser disk 1 Condenser disk 2 Light ring or λ− or λ/4-compensator 3 Centering screws 4 Axis 5 Centering keys 6 λ- oderλ/4-Platte 7 2.5 x...20 auxiliary lens

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14. Nachrüstungen

Attention:

Before fitting the disk into the condenser, make sure that neither of the centering screws is sticking out at the side.

• Fasten the condenser disk with the axis screw, check that the disk rotates properly through 360°.

•Affix the condenser with the condenser’s clamping screw.

Condenser UCA/P

• Unscrew the fastening screw of the disk. This is found on the underside of the condenser and must be fully screwed out.

•Turn back the centering screws until the light rings, λ - and λ/4 - compensator* and lens*

2.5x can be inserted.

The largest hole is for brightfield observation (= BF), the slightly smaller ones are light rings, λ - and λ/4 - compensator or lens* 2.5x.

Notes:

Attention:

Before fitting the disk into the condenser, make sure that neither of the centering screws is sticking out at the side.

• Fasten the condenser disk with the axis screw, check that the disk rotates properly through 360°.

•Affix the condenser with the condenser’s clamping screw.

Fig. 57 UCA/P condenser disk 1 Light ring „small, PH“ 2 Light ring „large“ for large holes 3 a, b DIC condenser prism 4 Marking for assembly of DIC condenser prisms 5 Marking K on the prism mount 6 Guide groove for prism 7 Adhesive label 8 Centering screws 9 Rotatable axis 10 λ or λ/4 compensator

If you use a smaller hole for brightfield, the maximum illumination aperture cannot be used.

The lettering (e.g. DF, PH 1 ....., λ) must point

upward, the λ or λ/4 compensators must be inserted with the correct orientation: The notch must point toward the center of the disk! The lettering of the components should

the marking at the opposite position (outer

correspond

edge of the disk).

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15. Index

106 z Lamp Housing 21, 31

Adapter lens 42

Adjusting the light sources 31 Ambient conditions 14 Analyzer 19, 24, 45 Analyzer mount TL 19, 24, 45 Aperture diaphragm 40, 41 Auxiliary condenser lens LS 18

Beam splitting 37 BG 38 46 Brightfield 43 Brightness 40

Camera 25 Care 54 Changing fuses 55 Changing objectives 39 Cleaning 54 Coarse focusing 36 Coaxial pinion 16, 35 Color-coded condenser 41 Compensators 45, 46 Condenser 11, 18 Condenser centering 29 Condenser disk 57 Condenser head 28, 43 Condenser height adjuster 18, 29 Condenser holder 18 Connection to the power supply 27 Contrast method 10 Corrective mounts 39 Cross position 45

Darkfield 44 DLF filter magazine 43 Dust cover 54

Electrical safety 8 Ergolift 26 Ergomodule 26 Eyepiece section 37 Eyepieces 19, 38

Field diaphragm 41 Filter holder(s) 24, 41, 43 Fine focusing 36 Fluorescence 46 Fluorescence filter cube 46 Fluorescence illuminator 21 Focusing 36 Focusing telescope 30 Focusing wheels 36 Fuse 56

Gas discharge lamps 21, 22, 23 Gout / Pseudo gout 49

Heat protection filter 45 Height adjustment of the focusing wheels 36 Hg 100 W and Xe 75 W mercury lamps 33 Hg 50 burner 22 Hg 50 W mercury lamp 32

Immersion objective 39 Immersion oil 39, 55, 56 Inlaid reticle 38 Installation location 14 Integrated illumination 20 Intermediate tube pole 19, 24

Köhler illumination 28

Lambda plate 45, 46

Lambda plate compensator 24, 49 Lengthening the coaxial pinion 35 Light intensity 40 Light ring 29, 41, 44 Light ring centering 30 Light ring slide 29, 44 Light sources 40 Linear measurements 47

Magnification changer 26 Micrometer value 47

Object displacement 35

Object marker 48 Objective magnification 2.5 x 42 Objective turret 10 Objectives 19, 39 Oblique illumination 45

Phase contrast 44 Phase contrast rings 29 Pol intermediate tube 45 Polarization 45 Polarizer 24, 45 Polarizer holder 24

Replacement lamp 56 Replacing the lamp 20 Right-/left-hand operation 36

Safety notes 8 Shutter 46 Specifications 8 Specimen holder 16 Stage 16, 35 Supply unit 21, 35

Thickness measurements 48 To rque 35 Tracing device 27 Transmitted light 42 Transmitted light filter 43 Transmitted light illumination 20 Transport 15 Tube 19, 37 Tube openings 37 Tube range 38

Viewing angle 37 Viewing attachments 26 Viewing distance 37 Vision problems 38

Xe 75 burner 22

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16. EU Declaration of Conformity

Download: http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_dm1000

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Leica DM1000

Bedienungsanleitung

MICROSYSTEMS

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Copyrights

Alle Rechte an dieser Dokumentation liegen bei der Leica Microsystems Wetzlar GmbH. Eine Vervielfältigung von Text und Abbildungen auch von Teilen daraus - durch Druck, Fotokopie, Mikrofilm oder andere Verfahren, inklusive elektronischer Systeme, ist nur mit ausdrücklicher schriftlicher Genehmigung der Leica Microsystems Wetzlar GmbH gestattet.

Die in der folgenden Dokumentation enthaltenen Hinweise stellen den derzeit aktuellen Stand der Technik sowie den derzeit aktuellen Wissensstand dar. Die Zusammenstellung von Texten und Abbildungen haben wir mit größter Sorgfalt durchgeführt. Trotzdem kann für die Richtigkeit des Inhaltes dieses Handbuches keine Haftung irgendwelcher Art übernommen werden. Wir sind jedoch für Hinweise auf eventuell vorhandene Fehler jederzeit dankbar.

Die in diesem Handbuch enthaltenen Informationen können ohne vorherige Ankündigung geändert werden.

Page 63

Inhalt

1. Wichtige Hinweise zur Anleitung ......... 6

2. Zweckbestimmung des Mikroskops..... 7

3. Sicherheitshinweise ................................ 8

3.1 Allgemeine Sicherheitshinweise............ 8

3.2 Elektrische Sicherheit .............................. 8

4. Geräteübersicht......................................... 10

5. Auspacken.................................................. 14

6. Montage des Mikroskops ....................... 16

6.1 Objekttisch .................................................. 16

6.2 Kondensor................................................... 18

6.3 Tubus und Okulare..................................... 19

6.4 Objektive ..................................................... 19

6.5 Lichtquelle für die Durchlichtachse ...... 20

6.6 Komponenten für

Fluoreszenzanwendungen ....................... 21

6.6.1 Fluoreszenzilluminator ................... 21

6.6.2 Lampenhaus 106z ........................... 21

6.7 Analysator und Polarisator..................... 24

6.8 Lambda-Plattenkompensator.................. 24

6.9 Optionales Zubehör................................... 25

6.10 Anschluss an die Stromversorgung ...... 27

7. Inbetriebnahme ......................................... 28

7.1 Einschalten ................................................. 28

7.2 Köhlersche Beleuchtung ......................... 28

7.3 Phasenkontrastringe überprüfen ........... 29

7.4 Justieren der Lichtquellen....................... 31

8. Bedienung .................................................. 35

8.1 Einschalten ................................................. 35

8.2 Tische und Objektverschiebung ............. 35

8.3 Fokussierung .............................................. 36

8.4 Tuben ........................................................... 37

8.5 Okulare ........................................................ 38

8.6 Objektive ..................................................... 39

8.7 Lichtquellen ................................................ 40

8.8 Aperturblende ............................................ 40

8.9 Leuchtfeldblende....................................... 41

9. Kontrastverfahren ..................................... 42

9.1 Durchlicht ................................................... 42

9.1.1 Hellfeld .............................................. 43

9.1.2 Phasenkontrast ............................... 44

9.1.3 Dunkelfeld ........................................ 44

9.1.4 Schiefe Beleuchtung ..................... 45

9.1.5 Polarisation ...................................... 45

9.2 Fluoreszenz ................................................. 46

10. Messungen mit dem Mikroskop ............ 47

10.1 Längenmessungen .................................... 47

10.2 Dickenmessungen ..................................... 48

10.3 Differenzierung

von Gicht/Pseudogicht ............................. 49

11. Trouble Shooting ....................................... 51

12. Pflege des Mikroskops ............................ 54

12.1 Staubschutz ................................................ 54

12.2 Reinigung .................................................... 54

12.3 Umgang mit Säuren und Basen .............. 55

12.4 Sicherungswechsel .................................. 55

13. Wichtigste Verschleiß-

und Ersatzteile ........................................... 56

14. Nachrüstungen .......................................... 57

14.1 Bestücken der Kondensorscheibe......... 57

15. Index ............................................................ 59

16. EU-Konformitätserklärung ...................... 60

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1. Wichtige Hinweise zur Anleitung

Achtung!

Diese Bedienungsanleitung ist ein wesentlicher Bestandteil des Mikroskops und muss vor Montage, Inbetriebnahme und Gebrauch sorgfältig gelesen werden.

Textsymbole, Piktogramme und ihre Bedeutung:

(1.2)

→

S.20

Diese Bedienungsanleitung enthält wichtige Anweisungen und Informationen für die Betriebssicherheit und Instandhaltung des Mikroskops und der Zubehörteile. Sie muss daher sorgfältig aufbewahrt werden.

Ziffern in Klammern, z.B. (1.2), beziehen sich auf Abbildungen, im Beispiel Abb.1, Pos. 2.

Ziffern mit Hinweispfeil, z.B. → S.20, weisen auf eine bestimmte Seite dieser Anleitung hin.

Achtung! Besondere Sicherheitshinweise in dieser Anleitung sind durch das nebenstehende Dreieckssymbol gekennzeichnet und grau unterlegt.

Achtung! Bei einer Fehlbedienung können Mi-

kroskop bzw. Zubehörteile beschädigt werden.

Erklärender Hinweis.

nicht in allen Ausrüstungen enthaltene Position.

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2. Zweckbestimmung des Mikroskops

Das Mikroskop Leica DM1000, zu dem diese Bedienungsanleitung gehört, ist für biologische Routine- und Forschungsanwendungen vorgesehen. Dies schließt die Untersuchung von aus dem menschlichen Körper stammenden Proben zum Zwecke der Informationsgewinnung über physiologische oder pathologische Zustände oder angeborene Anomalien oder zur Prüfung auf Unbedenklichkeit und Verträglichkeit bei potenziellen Empfängern oder zur Überwachung therapeutischer Maßnahmen ein.

Das oben genannte Mikroskop entspricht der EG-Richtlinie 98/79/EG über In-vitro-Diagnostika. Gleichzeitig erfüllt das Gerät die EG-Richtlinien 73/23/EWG betreffend elektrische Betriebsmittel und 89/336/EWG über die elektromagnetische Verträglichkeit für den Einsatz in industrieller Umgebung.

Für jegliche nicht-bestimmungsgemäße Verwendung und bei Verwendung außerhalb der Spezifikationen von Leica Microsystems Wetzlar GmbH, sowie gegebenenfalls daraus entstehender Risiken übernimmt der Hersteller keine Haftung. In solchen Fällen verliert die Konformitätserklärung ihre Gültigkeit.

Dies (IVD-) Gerät ist nicht zur Verwendung in der nach DIN VDE 0100-710 definierten Patientenumgebung vorgesehen. Es ist auch nicht zur Kombination mit Medizingeräten nach der EN 60601-1 vorgesehen. Wird ein Mikroskop mit einem Medizingerät nach EN 60601-1 elektrisch leitend verbunden, so gelten die Anforderungen nach EN 60601-1-1.

Achtung!

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3. Sicherheitshinweise

3.1 Allgemeine Sicherheitshinweise

Dieses Gerät der Schutzklasse 1 ist gemäß EN 61010-2-101:2002, EN 61010-1:2001, IEC 1010-1:2001, Sicherheitsbestimmungen für elektrische Mess-, Steuer-, Regel- und Laborgeräte gebaut und geprüft.

Um diesen Auslieferungszustand zu erhalten und einen gefahrlosen Betrieb sicherzustellen, muss der Anwender die Hinweise und Warnvermerke beachten, die in dieser Bedienungsanleitung enthalten sind.

Die in der Bedienungsanleitung beschriebenen Geräte bzw. Zubehörkomponenten sind hinsichtlich Sicherheit oder möglicher Gefahren überprüft worden. Bei jedem Eingriff in das Gerät, bei Modifikationen oder der Kombination mit Nicht-Leica-Komponenten, die über den Umfang dieser Anleitung hinausgehen, muss die zuständige Leica-Vertretung oder das Stammwerk in Wetzlar konsultiert werden!

Achtung!

3.2 Elektrische Sicherheit

Allgemeine technische Daten Mikroskop

Verwendung nur in Innenräumen. Versorgungsspannung: Frequenz: Leistungsaufnahme: Sicherungen: Umgebungstemperatur: Relative Luftfeuchtigkeit: Überspannungskategorie: Verschmutzungsgrad:

Achtung!

Der Netzstecker darf nur in eine Steckdose mit Schutzkontakt eingeführt werden.

Die Schutzwirkung darf nicht durch eine Verlängerungsleitung ohne Schutzleiter aufgehoben werden. Jegliche Unterbrechung des Schutzleiters innerhalb oder außerhalb des Gerätes oder Lösen des Schutzleiteranschlusses kann dazu führen, dass das Gerät gefahrbringend wird. Absichtliche Unterbrechung ist nicht zulässig!

90-250 V~ 50-60 Hz 90 W F 3,15 A 250 V 15-35°C max. 80% bis 30°C II 2

Bei einem nicht autorisierten Eingriff in das Gerät oder bei nicht bestimmungsgemäßem Gebrauch erlischt jeglicher Gewährleistungsanspruch!

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3. Sicherheitshinweise

Achtung!

Es ist sicherzustellen, dass nur Sicherungen vom angegebenen Typ und der angegebenen Nennstromstärke als Ersatz verwendet werden. Die Verwendung anderer Sicherungen oder Überbrückung des Sicherungshalters ist unzulässig. Es besteht Feuergefahr bei Verwendung anderer Sicherungen.

Achtung!

Die elektrischen Zubehörkomponenten des Mikroskops sind nicht gegen Wassereintritt geschützt. Wassereintritt kann zu einem Stromschlag führen.

Achtung!

Schützen Sie das Mikroskop vor zu hohen Temperaturschwankungen. Es kann zur Kondensatbildung und Beschädigung elektrischer und optischer Komponenten kommen. Betriebstemperatur: 15-35°C.

Achtung!

Schalten Sie vor dem Austausch der Sicherungen oder der Lampen unbedingt den Netzschalter aus und entfernen Sie das Netzkabel.

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4. Geräteübersicht

Spezifikation Kontrastverfahren

Durchlichtachse

Auflichtachse

Tubus

Leica DM1000

• Durchlicht: Hellfeld, Dunkelfeld, Phasenkontrast, Polarisation

• Auflicht: Fluoreszenz

Halogeneinbaubeleuchtung manuelle Einstellung von

• Helligkeit

• Aperturblende

• Leuchtfeldblende (nur mit Koehler-Kit)

Auflichtfluoreszenzilluminator bis Okularsehfeldzahl 20 mit

•Wechselschieber zur Aufnahme von 3 Filtersystemen

• Justierlinse für Lampe

• Lichtfalle zur Unterdrückung von Fremdlicht

• Blaufilter BG38 und Shutter, schaltbar

wahlweise mit

• festem oder variablem Einblickwinkel

• bis zu 3 Schaltstellungen

• einem oder zwei Kameraausgängen

• Ergotubus mit höhenverstellbarem Einblick und Kameraausgang

Vergrößerungswechsler

(optional)

Objektivrevolver

XY Tisch

• manuell

•Vergrößerungsstufen: 1x; 1,5x; 2x

• manuell

• 5-fach für Objektive mit M25-Gewinde

•mit Kondensorhalter

• Koaxialtrieb optional: teleskopierbar

• Rechts-/Linksbedienung wechselbar

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4. Geräteübersicht

Spezifikation Kondensor

Fokussierung

Leica DM1000

• Kondensor CL/PH 0.90/1.25 OIL mit Farbkodierung

• Kondensor CLP/PH 0.85 für Polarisation

• Kondensor Achr.apl. A 0.9 (P) mit ein-/ausschwenkbarem Kondensorkopf

• Universalkondensor UCL 0.90/1.25 OIL UCLP 0.85 für Polarisation mit Lichtringscheibe mit 5 Positionen

• Pol-Universalkondensor UCA/P mit wechselbarem Kondensorkopf und Kondensorscheibe mit 6 Positionen

• Fokushandrad für Grob- und Feinfokussierung

• Höhenverstellung

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4. Geräteübersicht

6 5

Abb. 1 Linke Stativseite Leica DM1000 1 Grob- und Feinfokussierung 2 Kondensorhöhenverstellung 3 Helligkeitseinstellung 4 Leuchtfeldblende 5 Aperturblende 6 Kondensor

12 3

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4. Geräteübersicht

Abb. 2 Rechte Stativseite Leica DM1000 1 Okulare 2 Okularstutzen 3 Tubus 4 Objektivrevolver mit Objektiven 5 Objekttisch mit Präparatehalter 6 Einbaubeleuchtung 7 Ein-/Ausschalter 8 Kondensorhöhenverstellung 9 Grob- und Feinfokussierung 10 Koaxialtrieb zur x-, y-Tischverschiebung

678910

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5. Auspacken

Entnehmen Sie zunächst vorsichtig alle Komponenten dem Transport- und Verpackungsmaterial.

Hinweis:

Das Berühren der Linsenoberfläche der Objektive ist möglichst zu vermeiden. Entstehen dennoch Fingerabdrücke auf den Glasflächen, so sind diese mit einem weichen Leder- oder Leinenlappen zu entfernen. Schon geringe Spuren von Fingerschweiß können die Oberflächen in kurzer Zeit angreifen. Weitere Hinweise im Kapitel „Pflege des Mikroskops” →

Achtung!

Mikroskop und Peripheriegeräte auf keinen Fall bereits jetzt an die Steckdose anschließen!

S. 54.

Aufstellungsort

Das Arbeiten mit dem Mikroskop sollte in einem staubfreien Raum erfolgen, der frei von Öl- und anderen chemischen Dämpfen und extremer Luftfeuchtigkeit ist. Am Arbeitsplatz sollen außerdem große Temperaturschwankungen, direkt einfallendes Sonnenlicht und Erschütterungen vermieden werden. Hierdurch können Messungen bzw. mikrografische Aufnahmen gestört werden.

Zulässige Umgebungsbedingungen: Temperatur 15–35°C Relative Luftfeuchtigkeit max. 80% bis 30°C

Mikroskope in warmen und feucht-warmen Klimazonen brauchen besondere Pflege, um einer Fungusbildung vorzubeugen. Weitere Hinweise in den Kapiteln „Pflege des Mikroskops“ →

S. 54.

Achtung!

Elektrische Komponenten müssen mindestens 10 cm von der Wand und von brennbaren Gegenständen entfernt aufgestellt werden.

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Transport

Für den Versand oder Transport des Mikroskops und seiner Zubehörkomponenten sollte die Originalverpackung verwendet werden.

Um Beschädigungen durch Erschütterungen zu vermeiden, sollten vorsorglich folgende Komponenten demontiert und gesondert verpackt werden:

• Schrauben Sie die Objektive heraus.

• Entfernen Sie den Kondensor.

• Entfernen Sie den Koaxialtrieb.

• Nehmen Sie die Lampenhäuser ab.

• Demontieren Sie den Brenner im Lampenhaus 106 z.

• Entfernen Sie alle beweglichen bzw. losen Teile.

5. Auspacken

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6. Montage

6. Montage des Mikroskops

Die Mikroskopkomponenten werden sinnvollerweise in dieser Reihenfolge montiert:

• Zubehör Objekttisch

• Kondensor

• Fluoreszenz*

• Zwischensysteme*

•Tubus

• Okulare

• Objektive

• Lampenhäuser mit Lichtquellen

• Polarisation*

Für die Montage ist nur ein universell verwendbarer Schlüssel notwendig, der im Lieferumfang enthalten ist. Zur Aufbewahrung des Schlüssels dient eine Magnetvorrichtung rechts an der Unterseite des Tisches. Bei Verwendung von Zwischensystemen und optischem Zubehör kann die Reihenfolge abweichen. Lesen Sie dazu das Kapitel „6.9 Optionales Zubehör“ →

S. 25.

6.1 Objekttisch

Achtung:

Vor der Komplettierung des Objekttisches dürfen noch keine Objektive eingeschraubt sein!

Präparatehalter

• Setzen Sie den Präparatehalter auf den Tisch auf und befestigen Sie ihn mit den beiden Schrauben (3.1).

Koaxialtrieb

Hinweis:

Der Koaxialtrieb kann sowohl rechts- wie auch linksseitig montiert werden.

Abb. 3 Objekttisch mit Präparatehalter 1 Befestigungsschrauben für Präparatehalter

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• Stecken Sie zunächst den flachen FokusFeintriebknopf auf der Seite auf, an der Sie den Koaxialtrieb befestigen wollen. Der Knopf wird magnetisch gehalten (4.1). Achten Sie darauf, dass der Knopf einrastet. Der andere Fokusknopf wird entsprechend auf der gegenüberliegenden Seite befestigt.

• Lockern Sie die Arretierungsschraube (5.1) links vorne am Tisch.

• Schieben Sie den Tisch so weit wie möglich nach hinten.

• Befestigen Sie den Koaxialtrieb mit der Schraube (6.1).

6. Montage

• Ziehen Sie den Tisch nach vorne und drehen Sie die Arretierungsschraube wieder fest.

Abb. 4 Fokushandrad 1 Magnethalterung für Fokus-Feintriebknopf

Abb. 5 Unterseite Objekttisch 1 Arretierungsschraube

Abb. 6 Montage Koaxialtrieb 1 Befestigungsschraube für Koaxialtrieb

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6. Montage

6.2 Kondensor

• Schrauben Sie gegebenenfalls den Kondensorkopf in den Kondensor ein.

• Drehen Sie den Kondensorhalter (Abb. 8) mittels der Kondensorhöhenverstellung (9.3) ganz nach unten.

• Drehen Sie die Klemmschraube für den Kondensor (9.2) soweit heraus, dass der Kondensor von vorne eingesetzt werden kann.

• Schieben Sie den Kondensor von vorne bis zum Anschlag in den Kondensorhalter ein. Auf der Unterseite des Kondensors befindet sich ein Orientierungsstift (7.1), der in die Führungsnut (8.1) einrasten muss.

• Ziehen Sie die Klemmschraube (9.2) für den Kondensor an, so dass der Kondensor arretiert wird.

Abb. 7 Kondensorunterseite (Beispiel CL/PH) 1 Orientierungsstift 2 Zusatzlinse LS

Hinweis:

Vor dem Mikroskopieren muss der Kondensor zentriert werden.

Köhlersche Beleuchtung S. 28.

→

Abb. 8 Kondensorhalter 1 Führungsnut

Abb. 9 Kondensorhalter 1 Kondensorzentrierung 2 Klemmschraube für Kondensor 3 Kondensorhöhenverstellung

2 1

Page 77

6. Montage

6.3 Tubus und Okulare

Hinweis:

Für Fluoreszenzanwendungen muss zuerst der Fluoreszenzilluminator montiert werden → S. 21.

Sofern vorhanden muss zuerst der Analysator* (10.1) ins Stativ eingesteckt werden. Die Orientierungsnut muss dabei in den Orientierungsstift (10.2) einrasten. Zur Aufnahme des Analysators kann auch die Analysatoraufnahme TL* 20 mm bzw. 60 mm zwischen Stativ und Tubus eingesetzt werden.

Optional ist auch ein Zwischentubus-Pol* mit ein- und ausschaltbarem Analysator und Bertrandlinse verfügbar.

Der Tubus wird direkt oder über Zwischenmodule am Stativ montiert:

• Drehen Sie die Klemmschraube (11.1) am Stativ etwas heraus.

• Setzen Sie den Tubus in die kreisförmige Aufnahme (Ringschwalbe) ein.

• Ziehen Sie die Klemmschraube (11.1) wieder fest.

• Die Okulare werden in die Okularstutzen am Tubus eingesetzt.

6.4 Objektive

Grundsätzlich nur Leica Objektive der Tubuslänge × (unendlich) verwenden! Standardgewindemaß ist M25. Es wird empfohlen, die Objektive so anzuordnen, dass die Vergrößerung ansteigt, wenn der Objektivrevolver gegen den Uhrzeigersinn gedreht wird.

Achtung:

Zur Montage der Objektive den Tisch möglichst weit absenken. Nicht besetzte Gewinde im Revolver mit Staub-Schutzkappen verschließen!

Abb. 10 Analysatoreinbau 1 Analysator 2 Orientierungsstift und -nut 3 Klemmschraube

Abb. 11 Befestigen des Tubus 1 Klemmschraube

Page 78

6. Montage

6.5 Lichtquelle für die Durchlichtachse

Achtung!

Achten Sie darauf, dass das Lampenhaus bzw. das Mikroskop von der Stromversorgung getrennt ist. Netzstecker und Stromversorgung während der Montage vom Netz trennen.

Achtung!

Es besteht generell bei den Lichtquellen eine Gefährdung durch Strahlung (Blendung, UVStrahlung, IR-Strahlung). Lampen müssen daher in geschlossenen Gehäusen betrieben werden.

Lampenwechsel bei der Einbaubeleuchtung

Die Durchlichtbeleuchtung mit NiedervoltHalogenglühlampe (Abb. 12) ist im Mikroskopfuß eingebaut und von der rechten Mikroskopseite zugänglich.

• Ziehen Sie den Einschub (12.2) heraus.

Achtung!

Die Glühlampe kann noch heiß sein!

• Ziehen Sie die defekte Glühlampe heraus.

Achtung!

Schutzhülle der neuen Lampe erst nach dem Einsetzen entfernen. Fingerabdrücke unbedingt vermeiden.

•Stecken Sie die neue Lampe mit der Schutzhülle bis gegen den Anschlag gerade in den Sockel. Achten Sie darauf, dass die Lampe gerade sitzt.

Abb. 12 Durchlichtbeleuchtung im Mikroskopfuß 1 Halogenglühlampe 2 Einschub

• Entfernen Sie die Schutzhülle der Lampe.

• Stecken Sie den Einschub (12.2) wieder ein.

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6.6 Komponenten für Fluoreszenzanwendungen

6.6.1 Fluoreszenzilluminator

6. Montage

Achtung!

Der Fluoreszenzilluminator wird vor dem Tubus montiert. Die Befestigung erfolgt über die seitliche Klemmschraube (13.1).

6.6.2 Lampenhaus 106z

Achtung!

Es besteht generell bei den Lichtquellen eine Gefährdung durch Strahlung (Blendung, UVStrahlung, IR-Strahlung). Lampen müssen daher in geschlossenen Gehäusen betrieben werden.

Achten Sie darauf, dass das Lampenhaus von der Stromversorgung getrennt ist. Netzstecker und Stromversorgung während der Montage vom Netz trennen.

Bei Montagearbeiten an Xe-Brennern immer mitgelieferte Schutzhandschuhe und Gesichtsschutz (Abb. 14) tragen (Explosionsgefahr).

Beachten Sie unbedingt die Gebrauchsanweisung und Sicherheitshinweise der Lampenhersteller! Vor dem Wechseln von Lampen diese mindestens 30 min abkühlen lassen!

Einsetzen der Gasentladungslampen (Hg und Xe) in das Lampenhaus 106z

Hg- und Xe-Lampen werden mit separaten Vorschaltgeräten betrieben. Bitte unbedingt die gesonderte Anleitung dieser Vorschaltgeräte beachten.

Abb. 13 Montage Fluoreszenzilluminator 1 Klemmschraube

Glasteile des Brenners nie mit bloßen Händen anfassen. Nie in den direkten Strahlengang blicken (Blendgefahr).

Das Lampenhaus 106 z wird mit verschiedenen Gasentladungslampen verwendet.

Abb. 14

Schutzhandschuhe und Gesichtsschutz

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6. Montage

Folgende Gasentladungslampen sind einsetzbar und erfordern unterschiedliche Stromversorgungsgeräte und Lampenfassungen (Abb. 16):

Typ Typische Lebensdauer*

Hg-Höchstdrucklampe 50 W (Wechselstrom) 100 h Hg-Höchstdrucklampe 100 W (Gleichstrom) 200 h Hg-Höchstdrucklampe 100 W (Gleichstrom Typ 103 W/2) 300 h Xe-Hochdrucklampe 75 W (Gleichstrom) 400 h

* Bitte beachten Sie die Datenblätter der Lampenhersteller.

• Zum Öffnen des Lampenhauses 106 z lösen Sie die Befestigungsschrauben (15.8) am Verschlussdeckel.

• Entfernen Sie die Transportsicherung (roter Kunststoffstab anstelle des Brenners) der Lampenfassung. Lösen Sie dazu die obere Klemmung (16.1). Ziehen Sie das Kühlelement (16.3) nach oben und drehen Sie es zur Seite. Lösen Sie die untere Klemmung (16.2) und entfernen Sie die Transportsicherung.

• Setzen Sie den Brenner in umgekehrter Reihenfolge ein.

Abb. 15 Lampenhaus 106 z (seitlich, geöffnet) 1 Deckel hochgestellt 2 Kollektor 3 Gasentladungslampe in Fassung 4 Reflektor (Spiegel) 5, 6, 7 Justierschraube x-y Reflektor 8 Befestigungsschrauben für Lampenfassung 9 Buchse für Kontaktstecker

Achtung!

Hg 50-Brenner:

Die Beschriftung muss nach dem Einbau aufrecht stehen. Ein evtl. vorhandener Glas-Abschmelznippel (16a.4) wird durch Drehen des Brenners so ausgerichtet, dass der Nippel später nicht im Strahlengang, sondern

seitlich orientiert ist.

Xe 75-Brenner: Schutzhülle des Brenners (16b.5) nach dem Einbau entfernen.

898

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6. Montage

• Setzen Sie die Lampenfassung wieder ein und ziehen Sie die Befestigungsschrauben (15.8) wieder an.

• Schließen Sie das Lampenhaus und ziehen Sie die Befestigungsschrauben wieder an.

• Setzen Sie das Lampenhaus an die AuflichtLampenhausaufnahme (17.1) an und befestigen Sie es mit der seitlichen Klemmschraube.

• Schließen Sie das Lampenhaus am Vorschaltgerät an.

Abb. 16 a-c Lampenfassungen für Gasentladungslampen 1 Obere Klemmung 2 Untere Klemmung 3 Kühlelement 4 Abschmelznippel des Hg 50-Brenners 5 Schutzhülle des Xe 75-Brenners

Abb. 17 Ansetzen des Lampenhaus 106z 1 Lampenhausaufnahme

Hg 50

Xe 75

Hg 100

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6. Montage

6.7 Analysator und Polarisator*

Analysator

Wurde der Analysator vor der Tubusmontage in die Tubusaufnahme eingesteckt (→ S. 19), ist kein weiterer Montageschritt notwendig. Bei Verwendung des Zwischentubus-Pol* bzw. der Analysatoraufnahme TL*:

• Entfernen Sie die Steckkappe auf der linken Seite.

• Schieben Sie den Analysator bis zur Rastung in die Aufnahme.

Polarisator

• Drehen Sie den Kondensor bis zum oberen Anschlag hoch.

• Entfernen Sie gegebenenfalls das Filtermagazin DLF auf dem Stativfuß.

• Stecken Sie stattdessen den Polarisatorhalter (Abb. 18) auf.

Alternativ:

• Befestigen Sie den Polarisatorhalter mit der linken Klemmschraube (19.1) an der Unterseite des Kondensorhalters. Entfernen Sie gegebenenfalls den Flipout-Blue-Filter.

• Stecken Sie den Polarisator mit der beschrifteten Seite nach oben in die untere Öffnung.

6.8 Lambda-Plattenkompensator*

• Drehen Sie den Kondensor bis zum oberen Anschlag hoch.

• Entfernen Sie gegebenenfalls das Filtermagazin DLF auf dem Stativfuß.

• Stecken Sie den Lambda-Plattenkompensator auf den Mikroskopfuß auf.

• Stecken Sie den Polarisator mit der beschrifteten Seite nach oben in die untere Öffnung.

Abb. 18 Filterhalter

mit 2 Positionen

Abb. 19 Montage des Polarisatorhalters 1 Klemmschraube

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6. Montage

6.9 Optionales Zubehör

Kamera

Über einen Adapter kann eine Kamera kann angeschlossen werden.

• Setzen Sie den Adapter auf den oberen Abgang des Tubus auf und befestigen Sie ihn mit der seitlichen Klemmschraube.

• Schrauben Sie die Kamera auf.

Hinweis:

Bei der Wahl des Adapters sind die Größe des Kamera-Chips und das Wechselsystem (cmount, B-mount, usw.) zu beachten. Siehe Tabelle.

Berechnung der Vergrößerung auf dem Monitor Die Vergrößerung V

auf dem Monitor kann

nach folgender Formel berechnet werden oder mittels eines Objektmikrometers und eines cmMaßstabs gemessen werden.

= Objektivvergrößerung x

Faktor-Vergrößerungswechsler* x TV-Adaptervergrößerung x Bildschirmdurchmesser Chipdurchm. der Kamera

Aufgenommene Bilddiagonale in mm bei 1-Zoll- 2/3-Zoll- 1/2-Zoll- 1/3-ZollKamera Kamera Kamera Kamera

Ohne variable Vergrößerung, nur für 1-Chip-Kameras:

c-mount-Adapter 1 x HC 16 11 8 6 c-mount-Adapter 0.63 x HC - 17.5 12.7 9.5 c-mount-Adapter 0.5 x HC - - 16 12 c-mount-Adapter 0.35 x HC - - - 17.1

Mit variabler Vergrößerung (Vario TV-Adapter) für 1-3 Chip-Kameras:

c-mount, 0.32-1.6 x HC - - 19

-5 18-3.8

B-mount (ENG), 0.5-2.4 x HC (1/2-Zoll) - - 16-3.3 -

erst ab Vario Faktor 0.42 x!

Ohne variable Vergrößerung, für 1-3 Chip-Kameras:

c-mount-Adapter 1 x - - 16 12 B-mount-Adapter 1 x - - 16 12 B-mount-Adapter 1.25 x - 17.5 - F-mount-Adapter 1 x - - 16 12 F-mount-Adapter 1.25 x - 17.5 - Dazu jeweils erforderlich: TV-Optik 0.5 x HC

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6. Montage

Ergomodul

Zur Erhöhung des Tubuseinblicks kann zwischen Tubus und Tubusaufnahme das Ergomodul 30 mm bzw. 60 mm eingesetzt werden. Die Befestigung erfolgt durch die seitliche Klemmschraube.

Ergolift

Für das Stativ steht ein Stativuntersatz zur Verfügung, der in der Höhe und Neigung über Stellräder verstellt werden kann, um eine optimale Arbeitsposition zu erhalten.

Vergrößerungswechsler

Optional kann ein Vergrößerungswechsler (Abb. 20) eingesetzt werden, der manuell bedient wird. An einem Rändelrad können die folgenden Vergrößerungsfaktoren eingestellt werden:

1x; 1,5x; 2x

Diskussionseinrichtungen

Diskussionseinrichtungen mit beleuchtetem Zeiger stehen für maximal 20 Beobachter zur Verfügung. Die Abstützung (21.3) muss exakt gerade gestellt werden. Der einblendbare Pfeil kann in x- und y-Rchtung verstellt werden (vertikal bewegen bzw. herausziehen und einstecken) (21.1) Durch Drehen des gleichen Hebels kann die Farbe geändert werden (rot/gelb). Die Helligkeit des Pfeils wird über (21.2) eingestellt.

Abb. 20 Vergrößerungs-

wechsler

Abb. 21 Diskussionseinrichtung 1 Bewegung des Leuchtzeigers in x- und y-Richtung und

Umschaltung des Farbfilters

2 Helligkeitsregelung 3 Verstellung der Stütze

Die externe Stromversorgung (Leuchtzeiger) ist nicht abgebildet.

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6. Montage

Zeicheneinrichtung

Die Zeicheneinrichtung L3/20 (Abb. 22) ermöglicht die Einspiegelung größerer Objekte neben dem Mikroskop in das mikroskopische Bild. Damit lassen sich u.a. sehr leicht Zeichnungen des Präparates durch Nachfahren der Objektkonturen erstellen oder Skalen einblenden.

6.10 Anschluss an die Stromversorgung

• Nach Abschluss der Montagearbeiten wird das Mikroskop mit dem mitgelieferten Netzkabel an die Spannungsversorgung angeschlossen (Abb. 23) .

• Gegebenenfalls auch das Lampenhaus oder das externe Vorschaltgerät an die Stromversorgung anschließen.

Abb. 22 Zeicheneinrichtung 1 Verschlussklappe

Abb. 23 Stativrückseite 1 Anschluss Spannungsversorgung

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7. Inbetriebnahme

7.1 Einschalten

• Schalten Sie das Mikroskop am Ein-/Ausschalter (24.1) ein.

Achtung:

Nach dem Einschalten der Gasentladungslampe muss der Brenner sofort justiert werden. Schalten Sie deshalb das Vorschaltgerät noch nicht ein. Arbeiten Sie zunächst im Durchlicht, um die Bedienelemente des Mikroskops kennenzulernen.

Abb. 24 1 Ein-/Ausschalter 2 Fokushandrad 3 Tischpositionierung

7.2 Köhlersche Beleuchtung

Der Kondensor ist bereits werkseitig zentriert. Bedingt durch den Aus- und Wiedereinbau des Kondensors kann jedoch in einigen Fällen eine Nachzentrierung des Kondensors nötig sein. Überprüfen Sie deshalb die Kondensorzentrierung.

Die folgenden Schritte werden für die Durchlicht-Hellfeldbeleuchtung erklärt.

• Schalten Sie ggf. die Position BF der Kondensorscheibe* ein.

• Ziehen Sie ggf. den Lichtringschieber* aus dem Kondensor heraus.

• Schwenken Sie ein Objektiv mit mittlerer Vergrößerung (10x-20x) ein. Für Kondensoren mit schwenkbarem Kondensorkopf: Schwenken Sie den Kondensorkopf ein. (Der Kondensorkopf wird für Objektive <10x ausgeschwenkt.)

• Legen Sie nun ein Präparat in den Präparatehalter des Tisches ein.

• Fokussieren Sie auf das Präparat mit dem Fokushandrad (24.2).

• Stellen Sie die Lichtintensität am Helligkeitsregler (25.2) ein.

• Schließen Sie die Leuchtfeldblende (25.3) bis der Rand der Blende in der Präparateebene erscheint (26a).

•Mit der Kondensorhöhenverstellung (25.1) verstellen Sie den Kondensor bis der Rand der Leuchtfeldblende scharf abgebildet ist (26b).

21 3

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7. Inbetriebnahme

• Liegt das Bild nicht in der Sehfeldmitte (26c), muss der Kondensor mit Hilfe der beiden Zentrierschrauben (25.4) in die Mitte des Sehfeldes bewegt werden. Der dafür notwendige Schlüssel ist magnetisch an der Unterseite des Tisches befestigt.

• Öffnen Sie die Leuchtfeldblende so weit, dass sie gerade aus dem Sehfeld verschwindet (26d).

Achtung:

Die Kondensorhöheneinstellung ist abhängig von der Präparatdicke und muss ggf. für unterschiedliche Präparate neu eingestellt werden.

Abb. 25 1 Kondensorhöhenverstellung 2 Helligkeitseinstellung 3 Leuchtfeldblende 4 Kondensorzentrierung

7.3 Phasenkontrastringe überprüfen

Ist Ihr Mikroskop für die Verwendung von Phasenkontrast ausgerüstet, ist die Kondensorscheibe bereits mit den zu den Objektiven passenden Lichtringen bestückt Die Lichtringe sind bereits werkseitig zentriert. Die Zentrierung sollte jedoch noch einmal überprüft werden.

Hinweis:

Bei Kondensoren ohne Kondensorscheibe wird ein Lichtringschieber verwendet, der seitlich in den Kondensor eingeschoben wird. Hierbei entfällt die Zentrierung.

Hinweis:

Beim Einschwenken eines für Phasenkontrast geeigneten Objektivs muss der entsprechende Lichtring eingestellt werden. Die Objektivgravur (z.B. PH 1) gibt den korrespondierenden Lichtring (z.B. 1) an.

Abb. 26 Köhlersche Beleuchtung a Leuchtfeldblende nicht fokussiert, nicht zentriert, b Leuchtfeldblende fokussiert, jedoch nicht zentriert, c Leuchtfeldblende fokussiert und zentriert,

Durchmesser jedoch zu klein,

d Leuchtfelddurchmesser = Sehfelddurchmesser

(Köhlersche Beleuchtung)

12 3

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7. Inbetriebnahme

• Setzen Sie anstelle eines Okulars das Einstellfernrohr (Abb. 27) in den Beobachtungstubus ein.

• Schwenken Sie das Phasenkontrastobjektiv mit der kleinsten Vergrößerung ein.

• Fokussieren Sie das Präparat mit dem Fokushandrad.

• Stellen Sie die Ringstruktur (29a) scharf, indem Sie den Klemmring (27.2) etwas lockern und die Augenlinse (27.1) verschieben.

• Ziehen Sie den Klemmring wieder an.

•Wählen Sie die korrespondierende Ringblende (Lichtring) im Kondensor.

• Sind Lichtring und Phasenring nicht, wie in Abb. 29c gezeigt, deckungsgleich, muss der Lichtring zentriert werden.

• Stecken Sie an der Rückseite des Kondensors die Zentrierschlüssel durch die dafür vorgesehenen Öffnungen (28.1).

Abb. 27 Einstellfernrohr 1 Verstellbare Augenlinse 2 Klemmring zur Fixierung der Fokuslage

• Drehen Sie die Zentrierschlüssel, bis der dunkle Ring (Phasenring im Objektiv) deckungsgleich mit dem geringfügig schmaleren hellen Ring (Lichtring im Kondensor) ist (29c).

•Wiederholen Sie den Vorgang für alle weiteren Lichtringe.

• Nach dem Zentrieren den Zentrierschlüssel wieder herausnehmen.

Abb. 28 Zentrierung Lichtringe (z.B: Kondensor UCL/P) 1 Zentrierschlüssel

Abb. 29 Zentriervorgang Phasenkontrast PH=Phasenkontrastring, LR=Lichtring

a Kondensor in Position Hellfeld (BF) b Kondensor in Position Phasenkontrast (PH),

Lichtring LR nicht zentriert

c Lichtring und Phasenring zentriert

ab c

PH LR

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7. Inbetriebnahme

7.4 Justieren der Lichtquellen

Eine Zentrierung ist nur bei Verwendung des Lampenhauses 106z notwendig.

• Bei Verwendung eines Vorschaltgerätes wird dieses zuerst eingeschaltet.

Achtung!

Nie in den direkten Strahlengang blicken!

Achtung!

Es besteht generell bei den Lichtquellen eine Gefährdung durch Strahlung (Blendung, UVStrahlung, IR-Strahlung).

Beim Lampenhaus 106 z werden direktes Bild des Lichtbogens (bei Gasentladungslampen) und dessen Spiegelbild getrennt fokussiert und zueinander justiert.

• Bringen Sie das Filtersystem bzw. den Reflektor in den Strahlengang.

• Legen Sie ein Blatt Papier auf den Objekttisch und fokussieren Sie die Oberfläche mit einem Trockenobjektiv schwacher bis mittlerer Vergrößerung.

• Stellen Sie die Leuchtfeld- und Aperturblende in eine mittlere Position.

•Machen Sie mit einem Stift eine Markierung auf das Papier und verschieben Sie die Markierung in die Mitte des beleuchteten Feldes.

• Entfernen Sie das Objektiv oder schwenken Sie eine nicht besetzte Position ein.

Die Lichtquelle wird jetzt auf dem Papier abgebildet. Unter Beobachtung der Lichtquelle wird die Lampe wie folgt justiert.

Abb. 30 Lampenhaus 106 z 1 Höhenjustierung der Lampe 2,4 Höhen- und Seitenjustierung des Spiegelbildes 3 Fokussierung des Reflektors 5 Seitenjustierung der Lampe 6 Kollektor (Fokussierung des Lampenbildes)

• Öffnen Sie ggf. den Shutter und entfernen Sie ggf. Streuscheiben* aus dem Strahlengang.

516

Page 90

7. Inbetriebnahme

Zentrieren der Quecksilberlampe Hg 50 W

• Auf dem Papier sehen Sie das direkte Bild des Lichtbogens und das Spiegelbild, die in der Regel gegeneinander verschoben sind.

• Stellen Sie das direkte Bild mit dem Kollektor scharf (30.6).

• Schwenken Sie das Spiegelbild des Lichtbogens mit den Justierknöpfen an der Rückseite des Lampenhauses (30.2,30.4) zur Seite oder ganz aus dem Strahlengang. Es bleibt das fokussierte Bild des Lichtbogens sichtbar (Abb. 31).

• Platzieren Sie das direkte Bild des Lichtbogens mit den Justierknöpfen (30.1) und (30.5) rechts oder links an einer gedachten Mittellinie der Zentrierfläche (Abb. 32).

• Schwenken Sie nun das Spiegelbild des Lichtbogens mit den Justierknöpfen (30.2) und (30.4) wieder ein und stellen Sie es mit Hilfe des Reflektors scharf (30.3).

Abb. 31 Direktes Bild des Lichtbogens fokussiert, aber

dezentriert (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 32 Direktes Bild des Lichtbogens in Sollposition

(in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

• Richten Sie das Spiegelbild symmetrisch zu dem direkten Bild aus (Abb. 33). Benutzen Sie dazu wieder die Justierknöpfe (30.2) und (30.4).

• Defokussieren Sie das Bild nun über den Kollektor mit dem Kollektorknopf (30.6) bis das Bild des Lichtbogens und das Spiegelbild nicht mehr zu erkennen sind und das Bild homogen ausgeleuchtet ist.

Abb. 33 Direktes Bild des Lichtbogens und Spiegelbild in

Sollposition (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

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7. Inbetriebnahme

Zentrieren der Quecksilberlampen Hg 100 W und Xe 75 W

• Auf dem Papier sehen Sie das direkte Bild des Lichtbogens und das Spiegelbild, die in der Regel gegeneinander verschoben sind.

• Stellen Sie das direkte Bild mit dem Kollektor scharf (30.6).

• Platzieren Sie das direkte Bild des Lichtbogens mit den Justierknöpfen (30.1) und (30.5) in der Mitte der Zentrierfläche, wobei die helle Spitze des Lichtbogens, der Kathodenbrenn-fleck, etwas außerhalb der Mitte liegen soll (Abb. 35).

• Schwenken Sie nun das Spiegelbild des Lichtbogens mit den Justierknöpfen (30.2) und (30.4) wieder ein und stellen Sie es mit Hilfe des Reflektors scharf (30.3).

Abb. 34 Direktes Bild des Lichtbogens fokussiert, aber

dezentriert (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 35 Direktes Bild des Lichtbogens in Sollposition

(in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

• Richten Sie das Spiegelbild symmetrisch zu dem direkten Bild aus (Abb. 36). Benutzen Sie dazu wieder die Justierknöpfe (30.2) und (30.4). Die V-förmige Abstrahlung der Lichtbögen von direktem Bild und Spiegelbild können überlagert werden.

Achtung!

Die hellen Spitzen der Lichtbögen, die Kathodenbrennflecke, dürfen jedoch keinesfalls übereinander projeziert werden, weil dann durch Überhitzung Explosionsgefahr besteht.

Abb. 36 Direktes Bild des Lichtbogens und Spiegelbild in

Sollposition (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

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7. Inbetriebnahme

Achtung!

Bei älteren Lampen ist die Struktur des Lichtbogens nicht mehr klar erkennbar. Das Bild ähnelt dann mehr dem einer HG 50-Lampe. Bild und Spiegelbild können daher nicht mehr exakt übereinander plaziert werden. Bringen Sie in diesem Fall beide Bilder zur Deckung.

• Defokussieren Sie das Bild nun über den Kollektor mittels des Knopfes (30.6) bis das Bild des Lichtbogens und das Spiegelbild nicht mehr zu erkennen sind und das Bild homogen ausgeleuchtet ist.

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8. Bedienung

8.1 Einschalten

Bei Verwendung einer Gasentladungslampe muss das Vorschaltgerät zunächst separat eingeschaltet werden.

Schalten Sie das Mikroskop am Ein/Aus-Schalter (37.1) ein.

Abb. 37 1 Ein-/Ausschalter 2 Grobfokussierung 3 Feinfokussierung 4 Tischpositionierung 5 Arretierungsschraube des Tisches 6 Befestigungsschraube des Koaxialtriebs

8.2 Tische und Objektverschiebung Verlängern des Koaxialtriebs

• Zum Verlängern ziehen Sie den unteren Griff (38b.1) nach unten. Dann führen Sie den oberen Griff (38b.2) entsprechend nach.

Einstellen der Gängigkeit (Drehmoment)

Das Drehmoment kann individuell durch zwei Rändel (38b.2, 38b.4) für X und Y angepasst werden.

Abb. 38a Standard-Koaxialtrieb, b Koaxialtrieb mit Höhen- und Drehmomenteinstellung

1 Objektverschiebung (Y-Richtung) 2 Einstellen der Gängigkeit (X-Richtung) 3 Objektverschiebung (X-Richtung)

4 Einstellen der Gängigkeit (Y-Richtung)

3 2 1

1 4

Page 94

8. Bedienung

Rechts-/Linksbedienung

Der Koaxialtrieb lässt sich sowohl rechts wie auch links am Tisch befestigen. (Siehe auch Montage S. 16f). Zum Wechseln der Seite gehen Sie folgendermaßen vor:

• Lockern Sie die Arretierungsschraube (37.5) links unten am Tisch. Den Schlüssel dafür finden Sie rechts an der Unterseite des Tisches.

Achtung!

Der Kondensor muss unbedingt abgesenkt werden!

• Schieben Sie dann den Tisch ganz nach hinten.

• Lösen Sie die Schraube (37.6) am Koaxialtrieb und ziehen Sie ihn heraus.

• Stecken Sie den flachen Fokus-Feintriebknopf (37.3) auf der Seite auf, an der Sie den Koaxialtrieb befestigen wollen. Der Knopf wird magnetisch gehalten. Achten Sie darauf, dass der Knopf einrastet. Der andere Fokusknopf wird entsprechend auf der anderen Stativseite befestigt.

• Befestigen Sie den Koaxialtrieb auf der anderen Tischseite, indem Sie die entsprechende Schraube wieder festziehen.

8.3 Fokussierung Grob- und Feinfokussierung

Auf beiden Stativseiten befinden sich Fokushandräder zur Grob- und Feinfokussierung (Abb. 37 und 39).

Die spezielle Form des flachen Fokus-Feintriebknopfs (37.3) ermöglicht es, gleichzeitg den Koaxialtrieb mit der Hand zu umfassen und mit einem Finger den Feintrieb zu bedienen. Deshalb sollte der flache Knopf auf der entsprechenden Seite aufgesteckt werden. Siehe Rechts-/Linksbedienung des Tisches.

Höhenverstellung der Fokusknöpfe

• Defokussieren Sie das mikroskopische Bild, indem Sie den Tisch mit einer Umdrehung des Grob-Fokushandrads (37.2, 39.1 ) nach unten verstellen.

•Umfassen Sie den rechten und linken Fokusknopf gleichzeitig und und schieben Sie die Knöpfe mit leichtem Druck nach oben bzw. nach unten in die gewünschte Position.

• Fokussieren Sie das Bild wieder.

Abb. 39 Fokusknopf mit Skalierung 1 Grobfokussierung 2 Feinfokussierung

• Bringen Sie den Tisch wieder in die Ausgangsposition und ziehen Sie die Arretierungsschraube wieder fest.

• Stellen Sie den Kondensor wieder ein.

1 2

Page 95

8. Bedienung

8.4 Tuben

Hinweis:

Verschließen Sie nicht benutzte Tubusausgänge, da sonst Streulicht die Beobachtung stören kann.

Augenabstand einstellen

Stellen Sie den Augenabstand der Okularrohre so ein, dass ein deckungsgleiches Gesamtbild wahrgenommen wird (Abb. 40).

Einblickwinkel einstellen

• Bei den Ergonomietuben HC LVB 0/4/4 und HC -/0/4 kann der Einblickwinkel durch Kippen des Binokulareinblicks eingestellt werden. Ergotubus (lang, schwenkbar): 0° - 35° Ergotubus (kurz, schwenkbar): 7,5° - 32,5°

• Bei den Ergotuben AET22 und EDT22 kann der Einblickwinkel durch Kippen des Binokulareinblicks im Bereich von 5° - 32° eingestellt werden (Abb. 41).

Abb. 40 Tubuseinstellung

↔ Einstellung des persönlichen Augenabstandes

1 Skala (mm), 2 Zwischenmodul*, im Bild: Ergomodul

Okularauszug an Armlänge anpassen

• Am Tubus AET22 können die Okulare bis zu 30 mm ausgezogen werden (Abb. 41).

Strahlenteilung bei Fototuben

Tubus EDT22: Die Lichtaufteilung zwischen Beobachtungsund Dokumentationsausgang ist fest eingestellt (50:50).

Tubus BDT25+: Die Lichtaufteilung wird manuell durch Herausziehen einer Schaltstange eingestellt.

Schaltstange Beobachtung Foto VIS 100 % 0 % 50/50 150 % 50 % PHOTO 110 % 100 %

Abb. 41 Individuelle Einstellungen am Tubus AET22

↔

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8. Bedienung

Tubus HC L 2TU: Die Lichtaufteilung wird manuell durch Herausziehen einer Schaltstange eingestellt.

Schaltstange Beobachtung Foto VIS 100 % 0 % PHOTO 110 % 100 %

Abb. 42 Tubusprogramm HC L 1 Binokularer Beobachtungstubus HC LB 0/3/4 2 Ergonomietubus HC LVB 0/4/4, binokular,

Einblickwinkel 0-35° zusätzlich Ergotubus (kurz) HC -/0/4, schwenkbar 7,5°-32,5°

3 Trinokularer Tubus H L1T 4/5/7, mit festem Strahlenteiler

(50% / 50%)

4 HC L1VT 0/4/4 wie 3,

jedoch mit verstellbarem Einblickwinkel 0-35°

5 Trinokularer Tubus mit 3 Schaltstellungen HC L3TP 4/5/7 6 Photostutzen, mit 2 Ausgängen (50% / 50%) 7 Photo-TV-Ausgang

8.5 Okulare

Hinweis:

Der Blendschutz der Okulare muss beim Mikroskopieren mit Brille abgenommen bzw. zurückgestülpt werden. Brillen mit Mehrbereichgläsern (Bifocal- und Gleitsichtgläser) müssen beim Mikroskopieren abgesetzt werden.

•Wählen Sie bei den schaltbaren Tuben mit Dokumentationsausgang die Stellung 100% VIS.

Okulare mit eingelegter Strichplatte

• Stellen Sie die Strichplatte durch Verstellen

der Augenlinse im Okular scharf ein.

• Fokussieren Sie das Objekt durch dieses

Okular.

• Schließen Sie dann das Auge und fokussie-

ren Sie das Objekt jetzt nur durch Verstellen des zweiten Okulars.

Korrektur bei Fehlsichtigkeit

• Blicken Sie mit dem rechten Auge durch das

rechte Okular und stellen Sie das Präparat scharf ein.

345

• Sehen Sie danach mit dem linken Auge auf

die gleiche Präparatstelle und drehen Sie den linken Okularstutzen so lange, bis die Objektstelle scharf abgebildet wird. Hierbei das Fokushandrad nicht betätigen!

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8.6 Objektive Objektivwechsel

8. Bedienung

Achtung!

Die Objektive werden manuell in den Strahlengang eingeschwenkt. Achten Sie darauf, dass der Revolver einrastet.

Beim Objektivwechsel sollten die Einstellungen für die

• Leuchtfeldblende → S. 41

• Aperturblende → S. 40

• Lichtintensität → S. 40

überprüft werden.

•Verwenden Sie bei Immersionsobjektiven das entsprechende Immersionsmedium. OIL: nur optisches Immersionsöl nach DIN/

ISO verwenden.

Reinigung → S. 54 W: Wasserimmersion. IMM: Universalobjektiv für Wasser, Glyzerin,

Ölimmersion.

Sicherheitsdatenblatt zum Immersionsöl beachten!

Hinweis:

Bei verriegelbaren Immersionsobjektiven drücken Sie zum Verriegeln die Frontpartie bis zum Anschlag nach oben (ca. 2 mm). Nach einer leichten Drehbewegung nach rechts ist das Objektiv verriegelt (Abb. 44). Bei Objektiven mit Korrektionsfassung passen Sie das Objektiv durch Drehen des Rändels an die Dicke des Deckglases an.

Abb. 43 Immersionsobjektiv, entriegelt Abb. 44 Immersionsobjektiv, verriegelt

↔

Page 98

8. Bedienung

8.7 Lichtquellen Durchlicht

• Regeln Sie die Helligkeit am Stellrad (45.1) .

Die Zahlenwerte am Stellrad sind keine Absolutwerte, sie dienen nur einer reproduzierbaren Einstellung. Der Maximalwert entspricht etwa 12 V, der Markierungspunkt einer Farbtemperatur von ca. 3200 K.

Hinweis:

Die Objektivreihen

HI PLAN xx SL und

HI PLAN CY xx SL (Synchronized Light) ermöglichen den Objektiv- wechsel ohne Anpassung der Lichtintensität.

Fluoreszenz

• Schalten Sie die Lampe am Vorschaltgerät

ein.

8.8 Aperturblende

Die Aperturblende (46.3) im Kondensor bestimmt Auflösung, Tiefenschärfe und Kontrast des mikroskopischen Bildes. Die beste Auflösung erreicht man, wenn die Aperturen von Objektiv und Kondensor etwa gleich sind.

Bei Einengen der Aperturblende unter die Objektivapertur nimmt das Auflösungsvermögen ab, der Kontrast wird dagegen angehoben. Eine für das Auge merkliche Verminderung des Auflösungsvermögens tritt bei Schließen der Aperturblende unter ca. 0.6x des Objektivs ein und sollte möglichst vermieden werden. Bei der Polarisationsmikroskopie ergibt ein Einengen der Aperturblende meist kräftigere Farben.

Die Aperturblende wird subjektiv nach Bildeindruck eingestellt, die Skala dient zur reproduzierbaren Einstellung ohne Zuordnung absoluter Aperturwerte.

Achtung!

Mindestabstand des Lampenhauses von der Wand, von Vorhängen, Tapeten, Büchern u.a. brennbaren Gegenständen 10 cm!

Brandgefahr!

Beachten Sie die gesonderte Anleitung zum Vorschaltgerät!

Abb. 45 1 Helligkeitseinstellung

Page 99

Farbkodierter Kondensor

Die Farbmarkierungen am Kondensor (46.2) korrespondieren mit den Farbringen der Objektive. Beim Objektivwechsel kann eine geeignete Aperturblendeneinstellung dadurch gefunden werden, dass die Aperturblende auf die entsprechende Farbmarkierung (entspricht 2/3 der objektivseitigen Apertur) gestellt wird.

Abb. 46 Kondensor CL/PH 1 Aufnahmeschlitz für Lichtringe u.ä. 2 Farbkodierung 3 Aperturblende 4 Filterhalter 5 Leuchtfeldblende

8. Bedienung

Achtung:

Die Aperturblende im Beleuchtungsstrahlengang dient nicht zur Einstellung der Bildhellig-

keit. Hierfür sind ausschließlich der Drehknopf zur Helligkeitsregulierung bzw. neutrale Lichtdämpfungfilter zu benutzen.

Eine Aperturblende im Objektiv wird im Normalfall voll geöffnet. Ein Einengen ergibt bei geringerer Bildhelligkeit:

Höhere Tiefenschärfe Geringere Deckglasempfindlichkeit Dunkelfeldeignung Kontrastveränderung

8.9 Leuchtfeldblende

Die Leuchtfeldblende (46.5) schützt das Präparat vor unnötiger Erwärmung und hält alles nicht zur Abbildung benötigte Licht vom Objekt fern, so dass der Kontrast gesteigert werden kann. Deshalb öffnet man sie immer nur so weit, dass das beobachtete oder photographierte Objektfeld gerade ausgeleuchtet wird. Ein Vergrößerungswechsel bedingt immer eine Anpassung der Leuchtfeldblende.

1 2

Page 100

9. Kontrastverfahren

9.1 Durchlicht Objektivvergrößerung 2.5x*

Die Kondensoren CL/PH bzw. CLP/PH sind ohne Zusatz ab einer Vergrößerung 4x verwendbar. Bei Verwendung eines Streulichtschiebers* ist auch die Vergrößerung 2.5x möglich, nicht je- doch bei Polarisation.

Die Kondensoren UCL bzw. UCLP sind ohne Zu- satz ebenfalls ab einer Vergrößerung 4x ver- wendbar. Bei Verwendung einer Anpassungslinse* (in der Kondensorscheibe ) ist auch die Vergrößerung

2.5 x möglich. Vor dem Einschalten der Anpassungslinse muss die Köhlersche Beleuchtung (→ S. 28 ) mit dem Objektiv 4x oder 10x eingestellt werden. Wechseln Sie danach zum Objektiv 2.5x, schwenken Sie die Linse ein, öffnen Sie die Aperturblende ganz und engen Sie die Leuchtfeldblende ein. Sind sichelförmige Abschattungen sichtbar, muss die Linse zentriert werden. Stecken Sie dazu beide Zentrierschlüssel von schräg hinten in den Kondensor ein und verstellen Sie solange bis die asymmetrischen Abschattungen verschwinden. Entfernen Sie die Zentrierschlüssel und öffnen Sie die Leuchtfeldblende wieder. Die Linse kann nur bis max. Objektivvergrößerung 20 x benutzt werden. Köhlersche Beleuchtung ist grundsätzlich nicht mehr exakt möglich!

Der Kondensor Achr.Apl.0.9 (P) ist ohne Zusatz ab einer Vergrößerung 4x verwendbar. Bei ausgeklapptem Kondensorkopf ist die Objektivvergrößerung 2.5x ohne Streuscheibe möglich, bei eingeklapptem Kondensorkopf muss die einsteckbare Streuscheibe verwendet werden (max. Okularsehfeldzahl 22).

Objektivvergrößerungen 1.6x und 2.5x*

Mit den Kondensoren CL/PH bzw. CLP/PH, UCL bzw. UCLP sind Vergrößerungen 1.6x und 2.5x ebenfalls möglich, wenn der Kondensor komplett entfernt wird. Die Leuchtfeldblende wird dann funktionell zur Aperturblende.

Hinweis:

Ist das Mikroskop für Polarisation ausgerüstet, müssen zur Durchführung der anderen Kontrastverfahren zunächst Analysator und Polarisator, sowie ggf. der Lambda-Plattenkompensator entfernt bzw. ausgeschwenkt werden.

Leica DM1000 User Manual [en, de, fr]

Specifications and Main Features

Frequently Asked Questions

User Manual