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Gebrauchsanweisung
CompactDry SL
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NISSUI ready-to-use, steril
Fertigplatten mit getrocknetem chromogenem
Nährmedium zum Nachweis von Salmonellen
A. Einleitung
Die Compact Dry Platten von NISSUI sind geeignet zum
Nachweis und zur Zählung von Mikroorganismen aus
Lebens- und Futtermitteln, Kosmetika und
pharmazeutischen Proben, sowie zur Hygieneüberwachung
und Kontaminationskontrolle im lebensmittelproduzierenden
Bereich. Durch die chromogenen Zusätze zeigen sich die
Bakterienkolonien in spezifischen Farben und sind einfach
auszuwerten.
Das Medium der Compact Dry SL Platten ist abgeleitet
vom Tripel-Zucker-Eisen-Agar. Salmonellen sind eindeutig
zu identifizieren durch die Darstellung als grüne Kolonien,
verbunden mit einer Gelbfärbung der Platte durch
Alkalisierung des Mediums. Schwefelwasserstoff-bildende
Salmonellen wachsen in schwarzen Kolonien auf gelbem
Medium.
B. Lagerung und Verwendbarkeit
CompactDry Platten sind stabil bei Raumtemperatur
und bei 4 °C. Trocken und lichtgeschützt lagern.
Bitte benutzen sie das Produkt nicht nach Ablauf der
aufgedruckten Haltbarkeit, da die Qualität dann nicht
mehr gewährleistet werden kann. Verwenden Sie das
Produkt nicht, falls es nicht ordnungsgemäß
verschlossen war, die Platten Flecken oder Färbungen
aufweist oder fremde Materialien enthält. Nachdem der
Öffnen der Blister können einzelne Platten entnommen
werden. Nicht benötigte Platten im Blister lassen und
diesen sorgfältig verschließen. Platten aus geöffneten
Blistern schnellstmöglich verbrauchen.
C. Probenvorbereitung
Aus Wasser oder flüssigen Lebensmitteln
1 Volumen flüssige Probe wird mit 9 Volumenteilen
Peptonwasser, gepuffert, versetzt. Anschließend wird
diese Mischung durch einen Membranfilter filtriert und
der Filter wird in Peptonwasser, gepuffert, überführt.
Aus festen Lebensmitteln
Überführen Sie 25 g des zu untersuchenden
Lebensmittel in einen sterilen Homogenisierungsbeutel.
Nach Zugabe von 225 ml Peptonwasser, gepuffert, wird
die Mischung circa 1 min. homogenisiert.
Von Oberflächen
Wir empfehlen die Verwendung des CompactDry Tupfers
(Best.-Nr 225K). Mit dem sterilen, feuchten Wattetupfer
kann die Oberfläche gewischt werden. Der Tupfer wird
zurück in die Aufnahmeflüssigkeit überführt. Nach
Schütteln wird die gesamte Lösung (1 ml) zu 9 ml
Peptonwasser, gepuffert, gegeben.
D. Anwendung
1. Die Proben im geschlossenen Homogenisierungsbeutel für 20-24 Stunden bei 35-37°C im Inkubator
anreichern
2. Die Probe im geschlossenen Beutel manuell
mischen.
3. Die Platte öffnen und 0,1ml (3 Tropfen) dieser
Vorkultur vorsichtig ca. 1 cm vom Rand der Platte
entfernt auf die Compact Dry SL aufgetragen. Die
Probe soll am Auftragungsort von der Platte aufgesaugt
werden und soll nicht den Plattenrand erreichen.
4. 1 mL steriles Wasser vorsichtig auf der
gegenüberliegenden Seite des Probenauftragspunktes
auf die Platte tropfen. Das Wasser diffundiert
automatisch und gleichmäßig in die Nährsubstanz und
rehydriert das Gewebe innerhalb von Sekunden zu
einem Gel.
5. Platte mit Deckel verschließen und auf matter
Fläche beschriften.
6. Geschlossene Platte umdrehen und bei
vorgegebener Temperatur inkubieren.
7. Nach Inkubation die Anzahl der farbigen Kolonien
von der Rückseite der Platte her zählen. Ein weißes
Papier als Unterlage erleichtert den Zählvorgang.
Inkubation:
Bitte verwenden Sie die von nationalen
Reglementierungen empfohlenen Inkubations-
temperaturen zur Analyse von Gesamtlebendkeimzahlen in Lebensmitteln.
Allgemeine Empfehlung: 42 °C für 24 h
E. Interpretation
Salmonellen-Positiv
1.) Es treten einzelne oder verschmierte schwarze oder
grüne Kolonien auf.
2.) Das Medium um diese Kolonien hat eine gelbe
Färbung angenommen.
3.) Die Kolonien sind vom Austragungsort der
Probenvorkultur über die Platte gewandert (Motilität)
Beim Vorhandensein aller drei Merkmale
(Farbumschlag nach gelb, grün-schwarze
Kolonienbildung und Motalität) ist von einer
Salmonellen-Kontamination auszugehen.
Bei einem Probenauftrag mit einer sehr hohen Anzahl
von Salmonellen werden keine
unterscheidbaren Einzelkolonien gebildet. Die gesamte
CompactDry SL Platte zeigt einen
Farbumschlag nach gelb mit fusionierten
schwarzen/grünen Kolonien.
Mögliche Samonella-positive oder –negative Kolonien
müssen durch mikrobiologische Nachweise bestätigt
werden.
Salmonellen-Negativ
Die Platte zeigt keinen Farbumschlag oder einen
Farbumschlag nach rot oder rot/lila (Fermentation der
Laktose und/oder der Sukrose durch Coliforme). Keine
grünen oder scharzen Kolonien sind sichtbar.
Bitte beachten: Sehr hohe Kolonienzahlen
verschiedener Proteus- und Pseudomonas-Stämme
können ebenfalls zu einem limitierten gelben
Farbumschlag führen. Hierbei sind aber weder
schwarze oder grüne Kolonien, noch ein Wandern der
Bakterien über die Platte sichtbar.
Andere Gram-negative Bakterien sind im Wachstum
inhibiert bzw. zeigen keinen Farbumschlag.
F. Allgemeine Bemerkungen
• Nicht alle Kolonien zeigen immer eine eindeutige
Färbung. Schwach gefärbte Kolonien sollten
sicherheitshalber als positiv gewertet werden.
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• Bitte verschließen Sie die Compact Dry Platten gut,
um ein Austrocknen während der Inkubation zu
verhindern
• Nach Gebrauch entsprechend der gültigen
Abfallregelung die Platten entsorgen.
• Die Plattenfläche beträgt 20 cm2. Auf der
Plattenrückseite ist ein Raster mit 1 x 1 cm
eingraviert, um die Koloniezählung zu erleichtern.
Sollte es problematisch sein auf Grund hoher
Koloniedichte eine ganze Platte auszuzählen, sind
einzelne Quadrate auszuzählen und der Mittelwert mit
20 zu multiplizieren.
• Compact Dry Platten können bis zu 300 Kolonien pro
Platte nachweisen. In solchen Fällen sollten
geeignete Verdünnungen ausplattiert werden.
• Compact Dry Platten werden in einem ISO 9001
zertifizierten Betrieb gefertigt.
CompactDry SL 4817.1 40 Platten
4817.2 240 Platten
Carl Roth GmbH + Co. KG
Schoemperlenstraße 3-5 • 76185 Karlsruhe
Postfach 100121 • 76231 Karlsruhe
Telefon: +49 (0) 721/ 5606-0
Fax: +49 (0) 721/ 5606-149
info@carlroth.de • www.carlroth.de sse 07/2021
Die Firma ist eine Kommanditgesellschaft mit Sitz in Karlsruhe, Reg. Gericht
Mannheim HRA 100055. Persönlich haftende Gesellschafterin ist die Roth Chemie
GmbH mit Sitz in Karlsruhe, Reg. Gericht Mannheim HRB 100428.
Geschäftsführer: André Houdelet
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CompactDry SL
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NISSUI ready-to-use, sterile
Ready-made plates with anhydrous chromogenic
nutrient medium for detection of samonellae
A. Introduction
Compact Dry plates made by NISSUI are suitable for
detection and enumeration of microorganisms from
foods and feeds, cosmetics and pharmaceutical
samples, as well as for hygiene monitoring and
contamination control in food-producing areas. Due to
the chromogenic additives, bacterial colonies depict
specific colouring, making them easy to interpret.
The nutrient medium used for Compact Dry SL plates is
deduced from the formulation of Triple Sugar Iron Agar.
Salmonellae may easily be identified by the green
colouring of the colonies, accompanied by colour shift of
the plate to yellow due to alcalization of the medium.
Salmonellae producing hydrogen sulphide grow in black
colonies on yellow medium.
B. Storage and Usage
CompactDry plates are stabile at room temperature and
at 4 °C. Store protected from moisture and light.
Do not use the product after its expiry date. Quality of
the product is not warranted after being expired. Do not
use the product that contains any foreign materials,
discoloured or dehydrated, or its container is damaged.
After opening the aluminum bag, any plates unused
should be put back into the aluminum bag to be sealed
with tape to avoid light and moisture, and use up as
soon as possible.
C. Sample preparation
From waters or liquid foods
Add 9 times volume of Buffered Peptone Water to 1 vol.
liquid specimen. Filtrate the liquid sample through
membrane filter, and put the filter into Buffered Peptone
Water.
From solid foods
Take 25 g of solid specimen into the sterilized
homogenizer bag. Add 225 ml of sterile Buffered
Peptone Water into the bag, and homogenize for about
one (1) minute
From surfaces
Wir recommend using the CompactDry Swab (Art. No.
225K). Use the swab to wipe the surface, put into the
device with wiping solution. Add 9 ml of Buffered
Peptone Water to 1 ml of this solution.
D. Application
1. Incubate the samples in the closed homogenizer
bag for 20-24 hours at 35-37 °C in the incubator for
preenrichment.
2. Rub the bag for homogenization.
3. Open the plate and gently drop 0.1 ml (3 drops) of
enriched specimen onto the dry sheet (approx. 1 cm far
from the edge of plate). This enriched culture will stay at
dropped point. Diffusion of this dropped specimen shall
not reach to the edge of plate.
4. Gently drop 1 ml of sterilized water at the opposite
point where the specimen dropped. The water diffuses
automatically and evenly into the sheet and transforms
the dried sheet into a gel within seconds.
5. Put the cap back onto the plate and note date and
sample on the memorandum section.
6. Turn over the capped plate and incubate at
appropriate temperature.
7. After incubation count the number of coloured
colonies underneath the plate. White paper placed
under the plate helps with counting.
Incubation:
Please use the incubation time/temperature according
to the national food analysis recommended for total
viable count.
General recommendation: 42 °C for 24 hours
E. Interpretation
Salmonella Positive
1.) Black to green isolated or fused colonies.
2.) Colour of sheet around the colonies is changed to
yellow.
3.) Colonies have wandered all over the plate (motility).
In case of all three parameters are positive, consider
sample as Salmonella contaminated.
If a large quantity of Salmonella is present, no isolated
colonies are formed Rather there may be several spots
with fused black or green colonies, and whole plate
sheet becomes yellow.
Putative Salmonella positive or negative colonies have
to be confirmed by microbiological identification and
confirmation tests.
Salmonella Negative
There is no colour with the medium. If it occurs, the
sheet colour would change to red or reddish purple due
to fermentation of lactose or sucrose by coliforms. No
black or green colonies are observed.
Please note: The sheet colour might change to yellow
caused by large colony numbers of Pseudomonas or
Proteus. But yellow portion is small and limited because
of their less motility. Other Gram-negative bacteria are
inhibited in growth or don’t show any colour shift.
F. General comments
• Some colonies may be only weakly coloured. Since
false-negative results have to be avoided, those
colonies have to be counted as positives.
• Make sure CompactDry plates are well closed during
incubation, in order to avoid drying.
• High concentrations on plates will cause the entire
growth area to become red/pink. In this case dilute
the sample.
• After use please follow the current disposal
regulations.
• The growth area is 20 cm². The back of the plate has
a grid carved of 1 x 1 cm to make the colony counting
easier. In case of any difficulties to count colonies due
to large number of colonies grown, total viable count
can be obtained by multiplying 20 by an average
number of colonies per grid counted from several
grids.
Instructions for use
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• Compact Dry plates may grow up to 300 colonies per
plate. In those cases we recommend appropriate
dilution of the samples.
• Compact Dry plates are produced at an ISO 9001
certified site.
CompactDry SL 4817.1 40 plates
4817.2 240 plates
Carl Roth GmbH + Co. KG
Schoemperlenstraße 3-5 • 76185 Karlsruhe
P.O. Box 100121 • 76231 Karlsruhe
Phone: +49 (0) 721/ 5606-0
Fax: +49 (0) 721/ 5606-149
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The company is a limited partnership with headquarters in Karlsruhe, reg. court
Mannheim HRA 100055. Roth Chemie GmbH, with headquarters in Karlsruhe, reg.
court Mannheim HRB 100428, is the personally liable partner. Managing Director:
André Houdelet. Sales tax identification number: DE 143621073.
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