Bresser BioDiscover Instruction Manual

Bedienungsanleitung
Instruction Manual
Mode d´emploi
Manual de instrucciones

Art.-Nr. 5013000

- 2 -

WARNUNG!!

Für die Arbeit mit diesem Gerät werden häufig scharfkantige und spitze Hilfsmittel eingesetzt. Bewahren Sie des-

halb dieses Gerät sowie alle Zubehörteile und Hilfsmittel an einem für Kinder unzugänglichen Ort auf. Lassen Sie

Kinder nur unter Aufsicht mit dem Gerät arbeiten!

Verpackungsmaterial (Plastiktüten, Gummibänder etc.) von Kindern fernhalten!

CAUTION!

To work with this microscope, sharp and pointed aids are being used. Please take care that this microscope and its

accessories are stored at a place out of reach of children. Let children only work with this microscope under an adult´s

supervision! Keep packing material (plastic bags etc.) away from children!

ATTENTION!

Pour le travail avec cet appareil on utilise souvent des ressources à angles vifs et pointus.

Pour cette raison stockez cet appareil ainsi que tous les accessoires et ressources

à un endroit inaccessible aux enfants.

Ne laissez travailler les enfants avec cet appareil uniquement sous surveillance!

Tenez le matériel d´emballage (sacs en plastique, élastiques, etc.) éloigné des enfants!

¡ATENCIÓN!

La utilización de este dispositivo suele requerir el empleo de herramientas puntiagudas o de bordes afilados,

lo que significa que deberá guardar éste y todos sus accesorios y elementos adicionales en

un lugar alejado del alcance de los niños. No deje que los niños manipulen el aparato, a menos que se

encuentren bajo supervisión de un adulto. Asimismo, mantenga el material de embalaje (bolsas de plástico,

bandas de goma, etc.) lejos del alcance de los niños.

- 3 -

A

b

c

D

E
F

G

H

1)

1!

1@

1#

1$

1%

1^

1&

I

J

I

- 4 -

B

2*

1(

2% 2^

2@

2# 2$

2!

2&

1*

2)

I

II

3!

3@

3)

2(

optional

optionnel

opcional

- 5 -

Alle Teile (Abb. A):

B

16x WF Okular

C

5x WF Okular

d

Barlowlinse

E

Okularstutzen

F

Mikroskopkopf

g

LED-Beleuchtung (Auflicht)

H

Kombirad für Grob- und
Feinfokussierung

i

Ein/Aus-Schalter / Dimmer

j

Stromanschluss

1)

Okularhalter

1!

Farbfilter-Blenden-Kombirad

1@

LED-Beleuchtung (Durchlicht)

1#

Mikroskoptisch

1$

Objektträger-Klemmen

1%

Objektiv

1^

Objektivrevolver

1&

Feststellschraube

Alle Teile (Abb. B):

1*

MikroCut

1(

Pinzette

2)

Pipette

2!

Präpariernadeln

2@

Garnelenbrutanlage

2#

Hefe

2$

Gum-Media

2%

Seesalz

2^

Garneleneier

2&

Box mit Objektträgern, Deck­gläsern und Dauerpräparaten

2*

Netzstecker

2(

Kreuztisch (optional)

3)

Befestigungsschraube

3!

Längs-Stellschraube

3@

Quer-Stellschraube

1. Allgemeines/Standort

Bevor Sie mit dem Aufbau Ihres Mikroskops beginnen, wählen Sie einen geeig­neten Standort. Zunächst sollten Sie darauf achten, dass Ihr Mikroskop auf ei­nem stabilen, erschütterungsfreien Untergrund steht. Für die Beobachtung mit
der elektrischen Beleuchtung wird bei Verwendung des mitgelieferten Netzteiles
ein Stromanschluss (220-230 V) benötigt. (Verwenden Sie bitte aus Sicherheits­gründen nur das mitgelieferte Netzteil. Fremdnetzteile entsprechen u. U. nicht
den erforderlichen technischen Spezifikationen. Schäden, die durch Fremdnetz­teile am Gerät entstehen, fallen nicht unter die Garantie.)

2. Elektrische LED-Beleuchtung mit Dimmer

Das Mikroskop ist mit zwei unabhängig regelbaren Beleuchtungseinheiten für
Ober- und/oder Unterlicht ausgestattet, die über die Dimmerräder (Abb. A 8) je
nach Bedarf eingeschaltet werden können. Durchlicht wird für klarsichtige Prä­parate (Präparate auf Objektträgern) eingesetzt. Um feste, undurchsichtige Ob­jekte zu betrachten, wählen Sie das Auflicht. Die gleichzeitige Benutzung der
Durch- und Auflichtbeleuchtung ist nur bei halbdurchsichtigen Objekten sinnvoll.
Diese Betriebsart ist für Durchlichtobjekte auf Objektträgern nicht empfehlens­wert, da es hier zu Reflektionen auf dem Objektträger kommen kann.

3. Farbfilter-Blenden-Kombirad

Mit dem Farbfilter-Blenden-Kombirad (Abb. A 11) unterhalb des Mikroskop­tisches können Sie die Abbildungsqualität bei der Betrachtung klarsichtiger Prä­parate beeinflussen. Feine Details werden je nach Farbe und Objekt besser dar­gestellt. Auch bei der Auflichtbetrachtung (z. B. transparente Objekte) kann far­biges Unterlicht in Kombination mit dem weißen Oberlicht die Detailabbildung
verstärken. Abhängig von der verwendeten Blendenöffnung wird durch die ent­sprechende Lichtbündelung zusätzlich die Schärfe, die Schärfentiefe sowie der
Kontrast und die Detail-Auflösung der Beobachtung beeinflusst.

4. Mikroskopeinstellung (Durchlicht)

Der Mikroskopeinblick (Abb. A 1-5) wird nun für die erste Beobachtung vorbe­reitet. Zunächst lösen Sie die Schraube (Abb. A 17) und drehen den Okular­stutzen (Abb. A 4) in eine für Sie bequeme Beobachtungsposition. Beginnen Sie
jede Beobachtung mit der niedrigsten Vergrößerung.

Fahren Sie den
Mikroskoptisch (Abb. A 13) mittels Scharfeinstellungsrad (Abb. A 7) ganz herunter
und drehen Sie dann den Objektivrevolver (Abb. A 16) bis er auf der niedrigsten
Vergrößerung (4x) einrastet. (Das 4x-Objektiv steht jetzt senkrecht nach unten.)
Setzen Sie das 5x Okular (Abb. A 2) in die Barlowlinse (Abb. A 3) ein.

Achten Sie da­rauf, dass die Barlowlinse ganz im Okularstutzen (Abb. A 4) steckt und nicht her­ausgezogen ist.

5. Beobachtung

Nachdem Sie das Mikroskop mit entsprechender Beleuchtung aufgebaut und
eingestellt haben, gelten folgende Grundsätze:
Beginnen Sie mit einer einfachen Beobachtung bei niedrigster Vergrößerung. Die
Zentrierung und Einstellung des zu betrachtenden Objekts ist so leichter. Je
höher die Vergrößerung ist, desto mehr Licht wird für eine gute Bildqualität be­nötigt. Platzieren Sie nun einen Objektträger mit Dauerpräparat direkt unter dem
Objektiv auf dem Mikroskoptisch und sichern Sie es mit den Objektträger-Klem­men (Abb. A 14). Wichtig: Das zu beobachtende Objekt muss genau im Strah­lengang der Durchlichtbeleuchtung liegen. Blicken Sie nun durch das Okular
(Abb. A 1/2) und drehen Sie vorsichtig an der Scharfeinstellung (Abb. A 7) bis
das Bild scharf ist. Mit dem Dimmerrad (Abb. A 8) wird die Helligkeit der Unter­lichtbeleuchtung so eingestellt, dass die Details des Präparates optimal darge­stellt werden. Jetzt können Sie eine höhere Vergrößerung einstellen, indem Sie
langsam die Barlowlinse (Abb. A 3) aus dem Okularstutzen (Abb. A 4) heraus­ziehen. Bei fast vollständig herausgezogener Barlowlinse kann die Vergrößerung
auf nahezu das Doppelte gesteigert werden.
Für noch höhere Vergrößerungen setzen Sie das Okular 16x (Abb. A 1) ein und
drehen den Objektivrevolver (Abb. A 16) auf höhere Einstellungen (10x/40x).

6. Beobachtungsobjekt – Beschaffenheit u. Präparierung

6.1 Beschaffenheit des Beobachtungsobjekts

Mit diesem Gerät, einem Auflicht- und Durchlichtmikroskop, können durchsich­tige sowie undurchsichtige Objekte beobachtet werden. Das Bild des jeweiligen
Beobachtungsobjektes wird über das Licht „transportiert“. Daher entscheidet
die richtige Beleuchtung darüber, ob Sie etwas sehen können oder nicht!
Betrachten Sie undurchsichtige (opake) Objekte (z.B. kleinere Tiere, Pflanzen­teile, Steine, Münzen usw.) mit diesem Mikroskop, so fällt das Licht auf den zu
betrachtenden Gegenstand. Von dort wird das Licht zurück geworfen und ge­langt durch Objektiv und Okular (bewirken die Vergrößerung) ins Auge (Auflicht­mikroskopie). Bei durchsichtigen (transparenten) Objekten (z.B. Einzeller) hinge­gen scheint das Licht von unten durch die Öffnung im Mikroskoptisch und dann
durch das Beobachtungsobjekt. Der Weg des Lichts führt weiter durch Objektiv
und Okular, wo wiederum die Vergrößerung erfolgt, und gelangt schließlich ins
Auge (Durchlichtmikroskopie).
Viele Kleinlebewesen des Wassers, Pflanzenteile und feinste tierische Bestand­teile haben nun von Natur aus diese transparente Eigenschaft, andere müssen
erst noch entsprechend präpariert werden. Sei es, dass wir sie mittels einer
Vorbehandlung oder Durchdringung mit geeigneten Stoffen (Medien) durchsich­tig machen, oder dadurch, dass wir feinste Scheibchen von ihnen abschneiden
(Handschnitt, MicroCutschnitt) und diese dann untersuchen. Mit diesen Metho­den wird uns der nachfolgende Teil vertraut machen.

6.2 Herstellen dünner Präparatschnitte

Wie bereits vorher ausgeführt, sind von einem Objekt möglichst dünne Schnitte

Wichtiger Hinweis:
Diese Anleitung beinhaltet am Anfang und am Ende jeweils eine ausklapp­bare Seite mit nummerierten Abbildungen. Sie dienen zum besseren Ver­ständnis des Anleitungstextes. Sämtliche Abbildungsnummern mit der
Bezeichnung A am Anfang weisen auf Abbildungen der ersten Klappseite
hin. Abbildungen zu Nummern, die mit der Bezeichnung B beginnen, fin­den Sie auf der Ausklappseite am Ende der Anleitung.

Inhaltsverzeichnis Seite

1. Allgemeines/Standort 4

2. Elektrische LED-Beleuchtung mit Dimmer 4

3. Farbfilter-Blenden-Kombirad 4

4. Mikroskopeinstellung (Durchlicht) 4

5. Beobachtung 4

6. Beobachtungsobjekt – Beschaffenheit und Präparierung 4

7. Mikroskopeinstellung (Auflicht) 5

8. Experimente (Durchlicht) 5

9. Optionales Zubehör 6

10. Pflege und Wartung 6

11. Technische Daten 6

12. Konformitätserklärung 6

13. Service - Garantie 6

Hinweis:
Bevor Sie die Objektiveinstellung wechseln, fahren Sie den Miroskoptisch
immer erst ganz herunter. Dadurch können Sie eventuelle Beschä­digungen vermeiden!

Wichtiger Hinweis:
Abhängig vom verwendeten Präparat führen höhere Vergrößerungen in
Einzelfällen nicht zu einem besseren Abbildungsergebnis!

Beachten Sie:
Bei veränderter Vergrößerungseinstellung (Okular- oder Objektivwechsel,
Herausziehen der Barlowlinse) muss die Bildschärfe am Scharfeinstel­lungsrad (Abb. A 7) neu eingestellt werden. Gehen Sie hierbei sehr vor­sichtig vor. Wenn Sie den Mikroskoptisch zu schnell herauffahren, können
sich Objektiv und Objektträger berühren und beschädigt werden!

herzustellen. Um zu besten Ergebnissen zu kommen, benötigen wir etwas
Wachs oder Paraffin. Nehmen Sie z. B. einfach eine Kerze. Das Wachs wird in
einen Topf gegeben und über einer Flamme erwärmt. Das Objekt wird nun meh­rere Male in das flüssige Wachs getaucht. Lassen Sie das Wachs hart werden.
Mit einem MicroCut (Abb. B 18) oder Messer/Skalpell (Vorsicht!!!) werden jetzt
feinste Schnitte von dem mit Wachs umhüllten Objekt abgeschnitten. Diese
Schnitte werden auf einen Glasobjektträger gelegt und mit einem Deckglas ab­gedeckt.

6.3 Herstellen eines eigenen Präparats

Legen Sie das zu beobachtende Objekt auf einen Glasobjektträger und geben
Sie mit einer Pipette (Abb. B 20) einen Tropfen destilliertes Wasser auf das Ob­jekt (Abb. B I).
Setzen Sie ein Deckglas senkrecht am Rand des Wassertropfens an, so dass
das Wasser entlang der Deckglaskante verläuft. Senken Sie nun das Deckglas
langsam über dem Wassertropfen ab (Abb. B II).

7. Mikroskopeinstellung (Auflicht)

Sie können die Ober- und Unterlichtbeleuchtung einzeln oder gemeinsam nut­zen und getrennt dimmen, so dass jedes Betrachtungsobjekt optimal ausge­leuchtet werden kann. Das beste Beobachtungsergebnis im Auflichtmodus er­reichen Sie bei einer Kombination von 5x Okular und 4x Objektiv. Bei einer ande­ren Kombination steigt der Vergrößerungsfaktor, der Blickwinkel wird jedoch re­duziert.

8. Experimente (Durchlicht)

Wenn Sie sich bereits mit dem Mikroskop vertraut gemacht haben, können Sie
die nachfolgenden Experimente durchführen und die Ergebnisse unter Ihrem
Mikroskop beobachten.

8.1 Zeitungsdruck

Objekte:

1. ein kleines Stückchen Papier einer Tageszeitung mit dem Teil eines Bildes und
einigen Buchstaben,

2. ein ähnliches Stückchen Papier aus einer Illustrierten.

Um die Buchstaben und die Bilder beobachten zu können, stellen Sie von jedem
Objekt ein zeitlich begrenztes Präparat her. Stellen Sie nun an Ihrem Mikroskop
die niedrigste Vergrößerung ein und benutzen Sie das Präparat von der Tages­zeitung. Die Buchstaben sehen zerfranst und gebrochen aus, da die Tages­zeitung auf rauem, minderwertigerem Papier gedruckt wird. Die Buchstaben der
Illustrierten erscheinen glatter und vollständiger. Das Bild der Tageszeitung
besteht aus vielen kleinen Punkten, die etwas schmutzig erscheinen. Die Bild­punkte (Rasterpunkte) des Illustriertenbildes zeichnen sich scharf ab.

8.2 Textilfasern

Objekte und Zubehör:

1. Fäden von verschiedenen Textilien: Baumwolle, Leinen, Wolle, Seide, Kunst­seide, Nylon usw.,

2. zwei Nadeln.

Jeder Faden wird auf einen Glasobjektträger gelegt und mit Hilfe der beiden
Nadeln aufgefasert. Die Fäden werden angefeuchtet und mit einem Deckglas
abgedeckt. Das Mikroskop wird auf eine niedrige Vergrößerung eingestellt.
Baumwollfasern sind pflanzlichen Ursprungs und sehen unter dem Mikroskop
wie ein flaches, gedrehtes Band aus. Die Fasern sind an den Kanten dicker und
runder als in der Mitte. Baumwollfasern sind im Grunde lange, zusammenge­fallene Röhrchen. Leinenfasern sind auch pflanzlichen Ursprungs, sie sind rund
und verlaufen in gerader Richtung. Die Fasern glänzen wie Seide und weisen
zahllose Schwellungen am Faserrohr auf. Seide ist tierischen Ursprungs und
besteht im Gegensatz zu hohlen pflanzlichen Fasern aus massiven Fasern von
kleinerem Durchmesser. Jede Faser ist glatt und ebenmäßig und hat das Aus­sehen eines kleinen Glasstabes. Wollfasern sind auch tierischen Ursprungs, die
Oberfläche besteht aus sich überlappenden Hülsen, die gebrochen und wellig
erscheinen. Wenn es möglich ist, vergleichen Sie Wollfasern von verschiedenen
Webereien. Beachten Sie dabei das unterschiedliche Aussehen der Fasern. Ex­perten können daraus das Ursprungsland der Wolle bestimmen. Kunstseide ist,
wie bereits der Name sagt, durch einen langen chemischen Prozess künstlich
hergestellt worden. Alle Fasern zeigen harte, dunkle Linien auf der glatten, glän­zenden Oberfläche. Die Fasern kräuseln sich nach dem Trocknen im gleichen
Zustand. Beobachten Sie die Gemeinsamkeiten und Unterschiede.

8.3 Wie entsteht Brotschimmel?

Objekt:

ein altes Stück Brot.
Die Sporen der Pilzart, die unser Brot befällt, sind überall in der Atmosphäre
anzutreffen. Legen Sie das Brot auf einen Objektträger und spritzen Sie vorsich­tig etwas Wasser darauf. Befeuchten Sie das Brot nur und lassen es sich nicht
vollsaugen! Legen Sie nun das Brot in ein Gefäß mit Schraubverschluss und
stellen es in einen Schrank, in den nur wenig Licht einfällt und in dem eine war-

me Temperatur herrscht. In kurzer Zeit bildet sich der Schwarze Brotschimmel.
Betrachten Sie das Brot jeden Tag. Als Erstes vom Schimmel zeigt sich ein wei­ßer, glänzender Flaum. Nehmen Sie ihn auf einen Objektträger zur Beobachtung.
Das Material stellt sich als eine verwickelte Fadenmasse heraus, die in ihrer
Gesamtheit den Pilzkörper bildet. Das Ganze bezeichnet man als Mycelium.
Jeder Faden ist eine Hyphe. Bald treten einige Rhizoiden auf, die den Schim­melpilz mit dem Brot verankern, um dadurch Wasser und Nährstoffe zum
Wachstum des Myceliums zu erhalten.
Im Laufe der Zeit färben sich die Rhizoiden bräunlich. Vertikal über diese Gruppe
wachsen Hyphen wie lange schlanke Stängel, die in einer winzig kleinen, weißen
Kugel enden. Den Stängel bezeichnet man als Sporangiophore (Träger der
Sporenkapsel), die Kugel ist das Sporangium (Sporenkapsel). Bald nehmen
diese Kugeln eine schwarze Farbe an. Die im Inneren befindlichen Sporen reifen.
Wenn die Sporenkapsel aufbricht, so setzt sie die Sporen frei, die nun an die Luft
treten und anderes Brot infizieren. Mit bloßem Auge können Sie die reifen Spo­renkapseln als winzige schwarze Flecken erkennen. Sie sind auf der Schimmel­pilzoberfläche verstreut und geben somit der Pilzart Ihren Namen. Es gibt aber
noch andere Arten von Schimmelpilzen. Sie können rosa, rot, blau oder grün
sein. Stellen Sie sich Präparate aller Stadien des Brotschimmels her.

8.4 Salzwassergarnelen

Zubehör:

1. Garnelenbrutanlage (Abb. B 22),

2. Hefe (Abb. B 23),

3. Gum-Media (Abb. B 24),

4. Seesalz (Abb. B 25),

5. Garneleneier (Abb. B 26).

8.4.1 Der Lebenszyklus der Salzwassergarnele

Die Salzwassergarnele oder „Artimia salina”, wie sie den Wissenschaftlern be­kannt ist, durchläuft einen ungewöhnlichen und interessanten Lebenszyklus. Die
von den Weibchen produzierten Eier werden ausgebrütet, ohne jemals von einer
männlichen Garnele befruchtet worden zu sein. Die Garnelen, die aus diesen
Eiern ausgebrütet werden, sind alle Weibchen. Unter ungewöhnlichen Umstän­den, z. B. wenn der Sumpf austrocknet, können den Eiern männliche Garnelen
entschlüpfen. Diese Männchen befruchten die Eier der Weibchen und aus der
Paarung entstehen besondere Eier. Diese Eier, sogenannte „Wintereier“, haben
eine dicke Schale, die das Ei schützt. Die Wintereier sind sehr widerstandsfähig
und bleiben sogar lebensfähig, wenn der Sumpf oder See austrocknet und
dadurch der Tod der ganzen Garnelenbevölkerung verursacht wird; sie können
5-10 Jahre in einem „schlafenden“ Zustand verharren. Die Eier brüten aus, wenn
die richtigen Umweltbedingungen wieder hergestellt sind. Die mitgelieferten Eier
(Abb. B 26) sind von dieser Beschaffenheit.

8.4.2 Das Ausbrüten der Salzwassergarnele

Um die Garnele auszubrüten, ist es zuerst notwendig, eine Salzlösung herzu­stellen, die den Lebensbedingungen der Garnele entspricht. Füllen Sie einen
halben Liter Regen- oder Leitungswasser in ein Gefäß. Dieses Wasser lassen Sie
ca. 30 Stunden stehen. Da das Wasser im Laufe der Zeit verdunstet, ist es rat­sam ein zweites Gefäß ebenfalls mit Wasser zu füllen und 36 Stunden stehen zu
lassen. Nachdem das Wasser diese Zeit „abgestanden“ hat, schütten Sie die
Hälfte des beigefügten Seesalzes (Abb. B 25) in das Gefäß und rühren solange,
bis sich das Salz ganz aufgelöst hat. Geben Sie nun etwas von dem hergestell­ten Seewasser in die Garnelenbrutanlage (Abb. B 22). Nun geben Sie einige Eier
hinzu und schließen den Deckel. Stellen Sie die Brutanlage an einen lichten
Platz, aber vermeiden Sie es, den Behälter direktem Sonnenlicht auszusetzen.
Die Temperatur sollte ca. 25° C betragen. Bei dieser Temperatur schlüpft die
Garnele nach ungefähr 2-3 Tagen aus. Falls während dieser Zeit das Wasser in
dem Gefäß verdunstet, füllen Sie Wasser aus dem zweiten Gefäß nach.

8.4.3 Die Salzwassergarnele unter dem Mikroskop

Das Tier, das aus dem Ei schlüpft, ist bekannt unter dem Namen „Nauplius­larve“. Mit Hilfe der Pipette (Abb. B 20) legen Sie einige dieser Larven auf einen
Glasobjektträger und machen Ihre Beobachtungen. Die Larve wird sich durch
die Salzwasserlösung mit Hilfe ihrer haarähnlichen Auswüchse bewegen. Ent­nehmen Sie jeden Tag einige Larven aus dem Gefäß und beobachten Sie sie
unter dem Mikroskop. Wenn Sie täglich die Larven mit Hilfe des MikrOkulars
beobachten und die erhaltenen Bilder speichern, erstellen Sie eine lückenlose
Bilddokumentation über den Lebenszyklus der Seewassergarnele. Sie können
auch die obere Kappe der Garnelenbrutanlage abnehmen und die gesamte An­lage auf den Mikroskoptisch setzen. Abhängig von der Raumtemperatur wird die
Larve innerhalb von 6-10 Wochen ausgereift sein. Bald werden Sie eine ganze
Generation von Salzwassergarnelen gezüchtet haben, die sich immer wieder
vermehrt.

8.4.4 Das Füttern Ihrer Salzwassergarnelen

Um die Salzwassergarnelen am Leben zu erhalten, müssen sie von Zeit zu Zeit
gefüttert werden. Dies muss sorgfältig geschehen, da eine Überfütterung be­wirkt, dass das Wasser fault und unsere Garnelenbevölkerung vergiftet wird. Die
Fütterung erfolgt am besten mit trockener Hefe in Pulverform (Abb. B 23). Alle
zwei Tage ein wenig von dieser Hefe zu den Garnelen geben. Wenn das Wasser
in der Brutanlage dunkel wird, ist das ein Zeichen dafür, dass es fault. Nehmen
Sie die Garnelen dann sofort aus dem Wasser und setzen Sie sie in eine frische
Salzlösung.

Hinweis:
Das mitgelieferte „Gum-Media“ (Abb. B 24) dient zur Herstellung von Dau­erpräparaten. Geben Sie dieses anstelle von destilliertem Wasser hinzu.
Das „Gum-Media“ härtet aus, so dass das Objekt dauerhaft auf dem Ob­jektträger verbleibt.

Achtung:

Die Garneleneier und die Garnelen sind nicht zum Verzehr geeignet!

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9. Optionales Zubehör

Für das Bresser BioDiscover ist optional ein Kreuztisch lieferbar (Abb. B 29). Für
die Montage entfernen Sie bitte die Objektträger-Klemmen (Abb. A 14).
Mit der Schraube (Abb. B 30) wird der Kreuzisch am Mikroskoptisch befestigt.
Mit den Stellschrauben (Abb. B 31 und 32) ist eine genaue Positionierung des
Objektes, in Längs- (Abb. B 31) oder Querrichtung (Abb. B 32), möglich.

10. Pflege und Wartung

Ihr Mikroskop ist ein hochwertiges optisches Gerät. Deshalb sollten Sie vermei­den, dass Staub oder Feuchtigkeit mit Ihrem Mikroskop in Berührung kommt.
Vermeiden Sie auch Fingerabdrücke auf allen optischen Flächen.
Sollte dennoch Schmutz oder Staub auf Ihr Mikroskop oder das Zubehör gera­ten sein, entfernen Sie diesen zuerst mit einem weichen Pinsel. Danach reinigen
Sie die verschmutzte Stelle mit einem weichen, fusselfreien Tuch. Fingerab­drücke auf den optischen Flächen entfernen Sie am Besten mit einem fussel­freien, weichen Tuch, auf das Sie vorher etwas Alkohol gegeben haben.
Nach der Benutzung sollten Sie das Mikroskop und das Zubehör an einem trok­kenen Ort aufbewahren.

11. Technische Daten

Vergrößerungstabelle
Okulare Objektive Vergrößerung mit Barlowlinse

5x 4x 20x 40x
5x 10x 50x 100x
5x 40x 200x 400x
16x 4x 64x 128x
16x 10x 160x 320x
16x 40x 640x 1280x

12. Konformitätserklärung

Die Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG, ansässig in 46414 Rhede/
Westf., Gutenbergstr. 2, Germany, erklärt für dieses Produkt die Übereinstim­mung mit nachfolgend aufgeführten EG-Richtlinien:

EN 61558-2-6:1997
EN 61558-1: 1997 +A1

Produktbeschreibung: Auflicht-/Durchlicht-Mikroskop
Typ / Bezeichnung: BRESSER BioDiscover

Rhede, 02. 07. 2007

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG

Helmut Ebbert
Geschäftsführer

13. Service - Garantie

Die Garantiezeit beträgt 2 Jahre und beginnt am Tag des Kaufs.

Bitte bewahren Sie den Kassenbon als Nachweis für den Kauf auf. Während der
Garantiezeit werden defekte Geräte von Ihrem Fachhändler vor Ort angenom­men und ggf. eingeschickt. Sie erhalten dann ein neues oder repariertes Gerät
kostenlos zurück. Nach Ablauf der Garantiezeit haben Sie ebenfalls die Mög­lichkeit, ein defektes Gerät zwecks Reparatur zurückzugeben.
Nach Ablauf der Garantiezeit anfallende Reparaturen sind jedoch kostenpflich­tig.

Händler

Name: ..................................................................................................................

PLZ / Ort:..............................................................................................................

Straße:..................................................................................................................

Telefon: ................................................................................................................

Kaufdatum: ..........................................................................................................

Unterschrift:..........................................................................................................

Bedenken Sie:
Ein gut gepflegtes Mikroskop behält auf Jahre hinaus seine optische Qua­lität und so seinen Wert.

Wichtig:
Achten Sie darauf, dass das Gerät sorgfältig verpackt in der Original­Verpackung zurückgegeben wird, um Transportschäden zu vermeiden!
Bitte den Kassenbon (oder Kopie) beilegen. Ihre gesetzlichen Rechte wer­den durch diese Garantie nicht eingeschränkt.

All parts (Fig. A)

B

16x WF eyepiece

C

5x WF eyepiece

d

Barlow lens

E

eyepiece barrel

F

microscope head

g

LED lighting (direct light)

H

focussing wheel

i

On/Off switch / dimmer

j

power connection

1)

eyepiece holder

1!

combined colour filter and
diaphragm wheel

1@

LED lighting (transmitted light)

1#

microscope stage

1$

specimen holder clamps

1%

objective

1^

nosepiece

1&

fixing screw

All parts (Fig. B)

1*

MicroCut

1(

tweezers

2)

pipette

2!

preparation needles

2@

shrimp hatchery

2#

yeast

2$

gum media

2%

sea salt

2^

shrimp eggs

2&

box of slides holders, covering
glasses and permanent specimens

2*

mains plug

2(

cross table (optional)

3)

fastening screw

3!

longitudinal adjustment screw

3@

crosswise adjustment screw

1. General /siting

Before you begin assembling your microscope first select a suitable position for
it. Make sure it stands on a stable base free of vibration.
Use of the electric lighting predicates mains power connection (220-230 V). (Use
only the power connections supplied for safety reasons. Other such parts may
not comply with the applicable technical specifications. We cannot accept any
liability whatsoever for any damage due to the use of third-party power
connection parts/plugs/sockets.)

2. Electric LED lighting with dimmer

The microscope has two independently adjustable lighting units for upper and
lower lighting that can be controlled using the dimmer wheel (Fig. A 8). The
transmitted light unit is used for transparent specimens on slides. To view solid
non-transparent specimens use the direct light unit. Simultaneous use of both
direct and transmitted light is only reasonable if the specimen is semi­transparent. This operating mode is not recommended for transmitted light
specimens on slides as it may cause reflection on the slide.

3. Combined colour filter and diaphragm wheel

Use this wheel (Fig. A 11), under the microscope table, to adjust observation
quality for transparent specimens. The finer details are better visible depending
on colour and specimen. In direct light examination of e.g. transparent
specimens coloured underlighting combined with white upper light may improve
detail imaging. Depending on the diaphragm opening used the appropriate light
bundling can improve focus, focus depth, contrast and detail resolution.

4. Microscope settings (transmitted light)

The microscope view (Fig. A 1-5) is now adjusted for the first observation. First
undo the screw (Fig. A 17) and turn the eyepiece barrel (Fig. A 4) until it reaches
a position comfortable for you. You can now look through the lens, always
beginning at the lowest magnification. Move the microscope stage (Fig. A 13)
down using the focussing wheel (Fig. A 7) and turn the lens nosepiece (Fig. A

16) to the lowest magnification (4x). (The 4x objective is now positioned
vertically downward.)
Insert the 5x eyepiece (Fig. A 2) into the Barlow lens (Fig. A 3). Make sure the Barlow
lens is wholly inserted in the eyepiece barrel (Fig. A 4) and does not project.

5. Observation

Once you´ve set the microscope up with the right lighting and settings the
principles below apply. Start with simple observation at lowest magnification.
Centring and adjustment of the specimen is thus made easier. The higher the
magnification the more light is needed for good observation quality. Place a
slide with a permanent specimen right under the objective on the microscope
stage and secure it in place with the clamps (Fig. A 14). Important: The
specimen must be precisely sited in the centre of the transmitted lighting. Look

through the eyepiece (Fig. A 1/2) and turn the focussing wheel (Fig. A 7) carefully
until you get it right. Use the dimmer wheel (Fig. A 8) to set the brightness of the
underlighting to view specimen details optimally. You can then set higher
magnification by slowly pulling the Barlow lens (Fig. A 3) out of the eyepiece
barrel (Fig. A 4). When nearly fully extracted magnification is nearly doubled.

For even higher magnification use the 16x eyepiece (Fig. A 1) and then turn the
nosepiece (Fig. A 16) to a higher setting (10x/40x).

6.

Observation specimen - characteristics and preparation

6.1 Condition

Both transparent and non-transparent specimens can be examined with this
microscope, which is a direct as well as transmitted light model. If opaque
specimens are examined - such as small animals, plant parts, tissue, stone and
so on - the light is reflected from the specimen through the objective and
eyepiece, where it is magnified, to the eye (reflected light principle). If
transparents specimens are examined the light from below goes through the
specimen, objective and eyepiece to the eye and is magnified en route (direct
light principle). Many small organisms of the water, plant parts and finest animal
components have now from nature these transparent characteristic, other ones
must be accordingly prepared. Is it that we make it by means of a pre-treatment
or penetration with suitable materials (media) transparent or thus that we cut
finest wafers off of them (hand cut, MicroCut) and these then examine. With
these methods the following part will us make familiar.

6.2 Producing a thin specimen slide

As already stated, specimens for microscopic observation should always be
sliced as thin as possible. A little wax or paraffin is needed to achieve the best
results. A candle can be used for the purpose. The wax is put in a bowl and
heated over a flame. The specimen is then dipped several times in the liquid
wax. The wax is finally allowed to harden. Use a MicroCut (Fig. B 18) or
knife/scalpel (careful!!!) to slice the wax-coated specimen as thinly as possible.
The slices are laid on slides and covered with a covering glass.

6.3 Making your own specimens

Place the specimen on the slide and add a drop of distilled water with a pipette
(Fig. B 20) to the specimen (Fig. B I). Set a covering glass vertically at the edge
of the drop so that the water runs along the glass edges (Fig. B II). Then slowly
place the covering slide atop the drop.

7. Microscope settings (direct light)

You can adjust both upper and lower lighting individually or together to optimally
illuminate any specimen. The best results in the direct light mode are achieved
by combining the 5x eyepiece and the 4x objective. Any other combination
increases magnification but reduces the field of visibility.

Important note:
These instructions include a fold-out page at the beginning and end
with numbered Fig.s. These make the instructions easily comprehensible.
All Fig. numbering with the prefix letter A refer to Fig.s on the first foldout
page. Fig.s with the prefix letter B refer to those on the back foldout page.

Index of contents Page

1. General / siting 7

2. Electric LED lighting with dimmer 7

3. Combined colour filter and diaphragm wheel 7

4. Microscope settings (transmitted light) 7

5. Observation 7

6. Observation specimen ­characteristics and preparation 7

7. Microscope settings (direct light) 8

8. Experiments (transmitted light) 8

9. Optional accessories 8

10. Care and maintenance 8

11. Technical data 8

12. EEC conformity explanation 9

13. Service - Warranty 9

Note
Before changing the objectives, always move the microscope stage right
down. This prevents possible damage.

Important note.
Higher magnification need not necessarily lead to better results. This
depends on the specimen.

Please note.
If magnification is changed (eyepiece or objective change, Barlow lens
extraction) the focus must be re-adjusted using the focussing wheel (Fig.
A 7). Be very cautious when doing this. If you turn the microscope stage
up too fast you may damage it and/or the slide.

Note
The gum media provided (Fig. B 24) is used in making permanent slides.
Add it instead of distilled water. The medium hardens and the specimen is
then permanently affixed to the slide.

- 8 -

8. Experiments (transmitted light)

Once you´re familiar with the microscope you can try the following experiments
and view the results.

8.1 Newspaper print

Objects:

1. A small piece of paper from a newspaper with parts of a picture and some
letters,

2. a similar piece of paper from an illustrated magazine.

Use your microscope at the lowest magnification and use the preparation of the
daily paper. The letters seen are broken out, because the newspaper is printed on
raw, inferior paper. Letters of the magazines appear smoother and more complete.
The picture of the daily paper consists of many small points, which appear
somewhat dirty. The pixels (raster points) of the magazine appear sharply.

8.2 Textile fibers

Objects and accessories:

1. Threads of different textiles: Cotton, linen, wool, silk, Celanese, nylon etc.,

2. two needles.

Each thread is put on a glass slide and frayed with the help of the two needles.
The threads are dampened and covered with a cover glass. The microscope is
adjusted to a low magnification. Cotton fibres are of vegetable origin and look
under the microscope like a flat, turned volume. The fibres are thicker and
rounder at the edges than in the centre. Cotton fibres consist primary of long,
collapsed tubes. Linen fibres are also of vegetable origin; they are round and run
in straight lines direction. The fibres shine like silk and exhibit countless swelling
at the fibre pipe. Silk is of animal origin and consists of solid fibres of smaller
diameter contrary to the hollow vegetable fibres. Each fibre is smooth and even
moderate and has the appearance of a small glass rod. Wool fibres are also of
animal origin; the surface consists of overlapping cases, which appear broken
and wavy. If it is possible, compare wool fibres of different weaving mills.
Consider thereby the different appearance of the fibres. Experts can determine
from it the country of origin of wool. Celanese is, like already the name says,
artificially manufactured by a long chemical process. All fibres show hard, dark
lines on the smooth, shining surface. The fibres crinkle after drying in the same
condition. Observe the thing in common and differences.

8.3 How does bread mould develop?

Object:

An old piece of bread.
The spores of the kind of mould, which strike our bread, are to be found
everywhere in the atmosphere. Put bread on a slide and squirt carefully some
water on it. Moisten bread only, don´t wet it. Put the whole into a container with
a screw-type cap and place it into a cabinet, into which only little light breaks in
and which prevails it in a warm temperature. Within a short time the black bread
mould forms. Regard the bread each day. At the first the mould shows up a
white, shining consistence. Take it on a slide to observe it. The material turns out
as a complicated thread mass, which forms the fungus body in its whole. One
calls the whole mycelium. Each thread is a hypha. Soon some rhizoids arise,
which embody the mould fungus with bread, in order thereby to receive water
and nutrients for the growth of the mycelium. In the course of time the Rhizoid
colours itself brownish. Vertically over this group hyphae grow like long slim
stacks, which end in a tiny small, white ball. One calls the stack sporangiophores
(carrier of the sporcap), the ball is a sporangium or a sporcap. Soon these balls
accept a black color. Inside spores present mature. If now the sporcap breaks
open, then it sets the spors free, which step now to air and infect other bread.
With the naked eye you can recognize mature the sporcaps as tiny black marks.
They are scattered on the mould fungus surface and give thus to the kind of
mushroom its name. There are however still different kinds of mould fungi. They
can be pink, red, blue or green. Manufacture yourselves preparations of all sta­ges of the bread mould.

8.4 Salt water shrimps

Accessories:

1. Yeast (Fig. B 23),

2. Gum media (Fig. B 24),

3. Sea salt (Fig. B 25),

4. Shrimp eggs (Fig. B 26),

5. Shrimp egg hatching plant (Fig. B 22).

8.4.1 The lifecycle of the saltwater shrimp

The saltwater shrimp or Artimia salina to scientists has an unusual and
interesting lifecycle. The female´s eggs are hatched without any male shrimp
having to fertilise them. The resultant baby shrimps are all female. Under unusual
conditions such as when a swamp is drained the eggs may produce male
shrimps. These males fertilise the female´s eggs, resulting in a specific type of
eggs. These are called winter eggs and have a thick shell as protection. They´re
pretty rugged and can survive the swamp or lake drying out causing the death
of the entire shrimp population for up to a decade in a form of hibernation. The
eggs hatch once the right ambient conditions again obtain. The eggs supplied
(Fig. B 26) are of this type.

8.4.2 Hatching of the salt water shrimp

To hatch the shrimp it is essential to first have a saline solution suited to the
shrimp’s needs. Fill half a litre of rain- or freshwater in a container. Let it stand
for about thirty hours. As water evaporates over time it´s a good idea to have a
second container of such water left standing for thirty-six hours. Once it´s stood
for this length of time pour half of the sea salt supplied into one of the

containers and stir until it has dissolved. Then pour some of it into the shrimp
sbreeding plant (Fig. B 22). Add a few eggs and close the lid. Put it somewhere
with plenty of light but not in the direct sun. The temperature should be
approximately 25° C. The shrimps will hatch in two or three days at this
temperature. Should any water evaporate during this time replace it from the
second container.

8.4.3 The saltwater shrimps under the microscope

What comes out of the egg is known as a nauplius larva. Use the pipette
(Fig. B 20) to put some of them on a slide for examination. They will move in the
solution using their hair like limbs. Remove a few daily from the container for
examination under the microscope. If you do so and save the pictures made with
the MicrOcular you will then have a seamless record of the shrimp´s lifecycle.
You can remove the upper lid of the shrimp´s breeding plant and put the whole
thing under the microscope. The larvae will mature in six to ten weeks
depending on ambient temperature. You will soon have bred an entire
generation of saltwater shrimps that constantly reproduce.

8.4.4 Feeding your saltwater shrimps

To keep them alive saltwater shrimps must be fed occasionally. This must be
done carefully as overfeeding causes the water to stagnate and poison the
shrimps. Feeding is best done with dry powdered yeast (Fig. B 23). Give them a
little every other day. If the water darkens this signifies it is stagnating. If so
remove the shrimps and put them in a fresh saline solution.

9. Optional accessories

A cross table is available for the Bresser BioDiscover as an optional accessory
(Fig. B 29). Remove the specimen holder clamps to install it (Fig. A 14).
Use the screw (Fig. B 30) to fasten the cross table to the microscope table. Use
the adjusting screws (Fig. B 31+32) to precisely position the specimen
longitudinally (Fig. B 31) and crosswise (Fig. B 32).

10. Care and maintenance

Your microscope is a top-quality optical device. Therefore please prevent dust
or damp affecting it. Avoid fingerprints on all optical surfaces. Remove any dirt
or dust with a fine soft brush first. Then clean the place/s affected with a soft
lint-free cloth. Fingerprints on optical surfaces are best removed with a lint-free
cloth dampened with a little alcohol.

11. Technical data

Magnification table
Eyepiece Objective Magnification with Barlow lens

5x 4x 20x 40x
5x 10x 50x 100x
5x 40x 200x 400x
16x 4x 64x 128x
16x 10x 160x 320x
16x 40x 640x 1280x

Note

Eggs and shrimps are unfit for human consumption!

- 9 -

12. EEC conformity explanation

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG, resident in 46414 Rhede/Westf.,
Gutenbergstr. 2, Germany, explains the agreement with in the following specified
EEC guidelines for this product:

EN 61558-2-6:1997
EN 61558-1: 1997 +A1

Product description: Biological-/ Stereo-type microscope
Model: BRESSER BioDiscover

Rhede, July 2007

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG

Helmut Ebbert
Managing director

13. Service - Warranty

The period of warranty is 2 years, beginning on the day of purchase.

Please keep the cash receipt as evidence of purchase. Devices which become
defective during the warranty period can be returned to the dealer where the
device was bought. The repaired device or a new one will then be returned to
you. In the case of defects which occur after the end of the warranty period, the
devices can also be returned. However, repairs which become necessary after
the end of the warranty period will be subject to a service fee.

Your dealer:

Name: ..................................................................................................................

Postcode / City: ..................................................................................................

Street: ..................................................................................................................

Telephone: ............................................................................................................

Date of purchase: ................................................................................................

Signature: ............................................................................................................

Important:
Make sure to return the device carefully packed in the original packaging
in order to prevent transport damage. Please also enclose the cash
receipt (or a copy). This warranty does not imply any restriction of your
statutory rights.

Notes

- 10 -

Descriptif (Fig. A):

B

Oculaire16x WF

C

Oculaire 5x WF

d

Lentille de Barlow

E

Tube porte-oculaire

F

Tête du microscope

G

Eclairage LED (éclairage incident)

H

Molette de mise au point

I

Interrupteur Marche/Arrêt /
Potentiomètre

J

Connecteur d´alimentation

électrique

1)

Rangement de l'oculaire

1!

Disque diaphragme et filtre

1@

Eclairage LED (lumière transmise)

1#

Platine

1$

Pinces valets

1%

Objectifs

1^

Tourelle révolver porte-objectifs

1&

Vis de blocage

Descriptif (Fig. B):

1*

Microtome

1(

Pince à épiler

2)

pipette

2!

aiguilles à dissocier pour
préparation

2@

Boite de Pétri

2#

Levure

2$

Gomme arabique

2%

Sel de mer

2^

Oeufs de crevettes

2&

Boite de lames porte-objets en
verre, lamelles couvre-objet et
préparations permanentes

2*

Adaptateur secteur

2(

Surplatine mobile (optionnelle)

3)

Vis de fixation

3!

Vis de réglage en profondeur

3@

Vis de réglage longitudinal

1. Généralités

Avant de commencer l´assemblage de votre microscope, choisissez une place
et position adaptés pour celui-ci. Assurez-vous que le statif repose sur une base
stable et exempte de vibrations.
L´utilisation de l´éclairage électrique nécessite un branchement sur le secteur
(220-230 V). (Utilisez uniquement les cordons électriques fournis pour des
raisons de sécurité).

2. Eclairage électrique LED avec variateur d´intensité

Le microscope possède deux systèmes d´éclairage réglables séparément. Ils
sont commandés à partir des potentiomètres, qui permettent d´en faire varier
l´intensité (Fig. A 8). L´utilisation simultanée des éclairages incident et transmis
est uniquement recommandée pour les spécimens semi-transparents. Ce mode
opératoire n´est pas conseillé pour les spécimens sur préparation dont le verre
peut provoquer des réflexions sur la lame porte-objet.

3. Disque combinant le filtre couleur et le diaphragme

Celui-ci (Fig. A 11). Situé sous la platine du microscope, il est nécessaire pour
obtenir une observation de qualité pour les spécimens transparents. Les plus
petits détails sont plus visibles en fonction de la couleur du spécimen. Lors d´un
examen en lumière directe par exemple, l´observation des spécimens
transparents colorés par le dessous combinée avec la lumière blanche peuvent
faire apparaitre des détails supplémentaires. En fonction de l´ouverture du
diaphragme utilisée, une combinaison d´éclairage appropriée peu améliorer la
netteté, la profondeur de champ, les contrastes et la résolution.

4. Réglages du microscopes (lumière transmise)

La visée du microscope (Fig. A 1-5) est maintenant réglé pour la première
observation. Desserez en premier lieu la vis (Fig. A 17) et orientez le tube porte
oculaire (Fig. A 4) de manière à trouver la position la plus confortable pour vous.
Vous pouvez maintenant regarder à travers l´oculaire. Toujours commencer par
le grossissement le plus faible. La mise au point s´effectue par l´intermédiaire de
la molette de réglage (Fig. A 7) et tournez la tourelle porte-objectifs (Fig. A 16)
sur la position la plus basse (4x). L´objectif 4x est maintenant positionné
verticalement vers le bas.

Insérez l´oculaire 5x (Fig. A 2) dans la lentille Barlow (Fig.
A 3). Veillez à ce que la lentille de Barlow soit complètement insérée dans le porte
oculaire (Fig. A 4) et ne présente aucun jeu.

5. Observation

Une fois le microscope bien réglé, les principes suivants s´appliquent:
Commencez avec une observation simple au plus faible grossissement. Le
centrage et le réglage du spécimen sera ainsi rendu plus facile. Plus le
grossissement sera important, plus il sera nécessaire d´utiliser un éclairage

puissant pour obtenir des observations de bonne qualité. Placez sur la platine
du microscope une lame déjà préparée de façon à ce qu´elle se présente juste
sous l´objectif et la bloquer à l´aide des pinces valets (Fig. A 14). Important. Le
spécimen doit se trouver précisément au centre du rayon lumineux de la lumière
transmise. Regardez à travers l´oculaire (Fig. A 1/2) et faites le mise au point
lentement avec la molette de réglage (Fig. A 7) jusqu´à l´obtention d´une image
bien nette. Utilisez le variateur d´intensité d´éclairage (Fig. A 8) pour régler la
luminosité de manière optimale pour bien éclairer le spécimen. Vous pouvez
désormais passer aux grossissements plus importants en tirant doucement la
lentille de Barlow (Fig. A 3) située dans le tube porte-oculaire (Fig. A 4). Lorsque
la lentille de Barlow est tirée au maximum, le grossissement est pratiquement
doublé. Pour obtenir des grossissements encore plus importants, vous pouvez
utiliser l´oculaire 16x (Fig. A 1) et placer la tourelle révolver (Fig. A 16) sur les
positions (10x/40x).

6. Observation d´un objet – condition et préparation

6.1 Conditions

Avec son double système d´éclairage direct et transmis, ce microscope convient
aussi bien à l´observation des spécimens transparents que non-transparents. Si
des spécimens opaques comme les petits animaux, les plantes, tissus,
minéraux, sont examinés – la lumière est réfléchie par le spécimen à travers
l´objectif et l´oculaire où il se présente grossit à l´observation (principe de lumière
réfléchie). Dans le cas d´examens d´objets transparents la lumière passe à
travers le spécimen, selon le principe de l´éclairage dit transmis. Beaucoup de
petits organismes contenus dans l´eau, plantes, les petits composants
d´animaux que l´on trouve dans la nature possèdent ces caractéristiques de
transparence. Les autres nécessitent une préparation particulière avec des
accessoires appropriés comme décrit ci-dessous.

6.2 Fabrication d´une préparation en coupe

Les spécimens doivent être découpés en tranches aussi fines que possible. Un
peu de cire, de gomme arabique ou de la paraffine sont nécessaires pour obtenir
les meilleurs résultats. Une bougie peut être employée. La cire est mise dans
une cuvette et chauffée au dessus d´une flamme. Le spécimen est alors plongé
plusieurs fois dans la cire liquide.
On laisse à la cire le temps de durcir. Employez un MicroCut (Fig. B 18) ou un
couteau/scalpel (Attention !!!) pour couper des tranches très minces de l´objet
dans son enveloppe de cire. Ces tranches sont alors placées sur une plaque en
verre et recouvertes d´un couvre lame.

6.3 Fabrication d´une préparation humide

Mettez l´objet qui sera observé sur une plaque en verre puis avec une pipette
(Fig. B 20) versez une goutte d´eau distillée sur l´objet (Fig. B I).
Couvrir délicatement avec un couvre lame en l´inclinant légèrement afin d´éviter
l´apparition de bulles d´air (Fig. B II). Bien veiller à ne pas trop appuyer sur la
préparation afin de ne pas détruire les organismes à observer.

Important :
Ces instructions comportent des pages doubles pages repliables au
début et à la fin du mode d´emploi avec les indications Fig.s numérotées.
Cela dans le but de rendre le manuel plus facilement compréhensible.
Toutes les Fig. Numérotées avec le préfixe A se rapportent à la première
double page. Celles avec le préfixe B à la dernière double page.

Index du contenu Page

1. Généralités 10

2. Eclarage électrique LED avec variateur d´intensité 10

3. Disque combinant le filtre couleur et le diaphragme 10

4. Réglages du microscope (lumière transmise) 10

5. Observation 10

6. Observation d´un objet- condition et préparation 10

7. Réglages du microscope (lumière incident) 11

8. Expériences (lumière transmise) 11

9. Accessoires optionnels 11

10. Entretien et maintenance 11

11. Données techniques 11

12. Conformité CE 12

13. Service Garantie 12

Note
Avant de faire la mise au point, déplacez la platine (Fig. A 13) vers la bas,
afin d´éviter des dommages

Important.
En fonction des objets observés, les grossissements plus élevés ne
donnent pas nécessairement des images de meilleure qualité.

Remarque:
Avec le changement de grossissement (oculaire, objectif ou lentille de
Barlow) la mise au point doit généralement être refaite en utilisant pour
cela la molette de réglage (Fig. A 7) pour obtenir une image toujours nette.
Veuillez faire attention lorsque vous déplacez la platine (Fig. A 13) vers le
haut à ne pas endommager la préparation avec les objectifs!

- 11 -

7. Réglages du microscope (lumière incident)

Vous pouvez régler individuellement ou ensemble les deux éclairages pour
éclairer de façon optimale la préparation en fonction de l´objet observé. Les
meilleures résultats en éclairage incident sont obtenus en combinant l´oculaire
5x et l´objectif 4x. Tout autre combinaison augmente le grossissement mais
réduit le champ de vision.

8. Expériences (lumière transmise)

En vous familiarisant déjà avec le microscope, vous pourrez réaliser les
expériences suivantes et en observer le résultat avec votre microscope.

8.1 Papier journal

Objets:

1. Un petit morceau de papier journal avec des parties d´ image et quelques
lettres.

2. Un morceau de papier semblable à un magazine illustrée.

Utilisez le grossissement le plus faible de votre microscope et placez la
préparation du papier journal. Les lettres vues sont éclatées, parce que le
journal est imprimé sur du papier de qualité grossière. Les lettres des magazines
apparaissent plus lisses et plus complètes. L´image du journal se compose de
beaucoup de petits points, qui semblent quelque peu sales. Les Pixels (trame
des points) du magazine apparaissent beaucoup plus nets.

8.2 Fibres textiles

Articles et accessoir

es:

1. Fils de différents textiles: Coton, ligne, laine, soie, soie artificielle, nylon etc.

2. Deux aiguilles.

Chaque fil est mis sur une plaque en verre et frangé avec l´aide des deux
aiguilles. Les fils sont humectés de et couverts avec un couvre lame.
Le microscope est ajusté sur un faible grossissement. Les fibres de coton sont
d´origine végétale et apparaissent sous le microscope sous forme de volume
plat et ourlé. Les fibres sont plus épaisses et plus rondes sur les bords qu´au
centre.
Toile: les fibres sont également d´origine végétale; Elles sont rondes et forment
de longues lignes droites. Les fibres brillent comme de la soie. La soie est
d´origine animale et se compose des fibres pleines de plus petit diamètre
contrairement aux fibres végétales creuses. Chaque fibre est lisse et se présente
sous l´aspect d´une petite tige de verre.
Les fibres de laines sont également d´origine animale; à la surface les fibres qui
la compose semblent cassées et onduleuses. Vous pouvez, comparez les fibres
de laines provenant de différents ateliers de tissage. Considérez de ce fait les
aspects différents des fibres. Les experts peuvent déterminer la provenance et
l´origine des laines en procédant de cette façon. La soie artificielle est comme
son nom l´indique, artificiellement fabriquée par un long processus chimique.
Toutes les fibres apparaissent dures et foncée sous une surface lisse et brillante.

8.3 Comment les champignons se développent-t-ils sur le pain?

Objet:

Un vieux morceau de pain
Les spores du champignon, qui apparaissent sur un vieux morceau de pain, se
trouvent partout dans l´atmosphère. Mettez le pain sur une lame en verre et
injectez soigneusement un peu d´ eau dessus.Humidifiez le pain seulement,
mais ne le mouillez pas. Mettez le contenu dans un bocal en verre puis le
refermer à l´aide d´un couvercle à vis en veillant à ce que juste un peu de lumière
passe et de le conserver à la chaleur ambiante. Dans un laps de temps
relativement court ,des champignons noirs vont se former sur le pain. Surveillez
le pain chaque jour. Au début apparait une matière blanche et brillante. Placez
la sur une lame en verre pour l´observer. La matière se transforme ensuite en une
masse compliquée, qui forme le corps du champignon, appelée mycélium.
Au cours du temps le champignon prend une couleur brunâtre. A la verticale de
cette masse, pousse l´hyphe qui se présente comme une longue tige se
terminant par une minuscule boule blanche. La boule est un Sporangium ou
Spiracle. Bientôt ces boules prennent une couleur noire. A l´oeil nu vous pouvez
distinguer les marques noires minuscules. Il en existe cependant de formes et
couleurs différentes et peuvent également être roses, rouges, bleues ou vertes.
Découvrez-les vous même en fabriquant des préparations à partir de ces
moisissures sur le pain.

8.4 Crevettes roses

Accessoir

es et objets nécessaires:

1. Boite de Pétri (Fig. B 22)

2. Levure (Fig. B 23)

3. Gomme arabique (Fig. B 24)

4. Sel de mer Fig. (B 25)

5. Oeufs de crevette (Fig. B 26)

8.4.1 Le cycle de vie de la crevette

La crevette d´eau de mer ou salina artémia présente un cycle que vie hors du
commun, qui a toujours intéressé et passionné les scientifiques. Les oeufs de la

femelle vont éclore sans devoir être fertilisés par un mâle. Toutes les crevettes
provenant de ces oeufs sont des femelles. Lors de circonstances peu
communes comme quand un marais est asséché les oeufs peuvent donner des
crevettes roses mâles. Ces mâles fertilisent les oeufs de la femelle, en ayant
pour résultat un type spécifique d´oeufs. Ceux-ci s´appellent les oeufs d´hiver et
ont une coquille épaisse comme protection. Ils sont assez vivaces et peuvent
survivre dans un marais ou un lac desséché entraînant la mort de la population
entière de crevettes roses pendant des décennie sous une forme d´hibernation.
Les oeufs (Fig. B 26) ne vont éclore qu´une fois les bonnes conditions ambiantes
réalisées.

8.4.2 L´examen de la crevette d´eau salée

Pour examiner la crevette il est essentiel d´avoir une solution saline qui
convienne à la crevette. Remplissez un récipient d´un demi litre d´eau de pluie
ou d´eau douce. Laissez le pendant environ trente heures. A mesure que l´eau
s´évapore, il peut être utile de disposer d´ un deuxième récipient du même type
à conserver pendant trente-six heures. Une fois la durée écoulée versez la moitié
du sel de mer (Fig. B 25) fourni dans un des récipients et remuez jusqu´à ce qu´il
se soit dissous. Versez alors une partie dans la boite de Pétri (Fig. B 22). Ajoutez
quelques oeufs et fermez le couvercle. Placer l´ensemble à la lumière mais pas
directement sous les rayons du Soleil.
La température doit être approximativement 25° C. Les crevettes vont éclore
sous deux à trois jours à cette température. Si de l´eau s´évapore pendant ce
temps remplacez-la avec celle du deuxième récipient.

8.4.3 La crevette d´eau de mer au microscope

Ce qui sort l´oeuf est connu comme larve de nauplius. Employez la pipette (Fig.
B 20) pour en mettre certains sur la lame en verre pour l´examen. Ils vont se
déplacer dans la solution en utilisant leurs cheveux comme des membres.
Prélevez en quelques uns quotidiennement pour l´examen au microscope. Si
vous procédez ainsi, vous pourrez enregistrer les images faites avec le
MicrOcular, vous obtiendrez alors une évolution progressive du cycle de vie de
la crevette. Vous pouvez enlever le couvercle supérieur de la boite de Pétri et la
placer sous l´objectif du microscope. Les larves mûriront en six à dix semaines
selon la température ambiante. Vous obtiendrez bientôt une génération entière
de crevettes d´eau de mer qui se reproduisent en permanence.

8.4.4 Alimentation de vos crevettes d´eau de mer

Pour garder des crevettes d´eau de mer vivantes, elle doivent être alimentées de
temps en temps. Ceci doit être fait soigneusement et sans excès pour éviter de
faire stagner l´eau et d´empoisonnez les crevettes. L´alimentation appropriée est
proposée sous forme de poudre levure (Fig. 23). N´en donner qu´un peu chaque
jour.Si l´eau s´obscurcie ceci signifie qu´elle stagne. Dans ce cas enlevez les
crevettes et placez les dans une solution saline fraîche

9. Accessoires optionnels

Une surplatine à déplacements orthogonaux est disponible en option pour le
Bresser BioDiscover (Fig. B 29). Enlever les pinces valets pour la monter à la
place (Fig. A 14).
Utilisez les vis (Fig. B 30) pour fixer la surplatine sur la platine du microscope.
Utilisez les vis de réglage (Fig.s B 31+32) pour positionner avec précision le
spécimen à observer (Fig. B 31 et B 32).

10. Entretien et maintenance

Le microscope est un appareil optique de qualité. Par conséquent vous devez
vous assurer que la poussière ou l´humidité n´entrent pas en contact avec votre
microscope.
Évitez de mettre des empreintes digitales sur toutes les surfaces optiques. Si
des poussière ou de la saleté viennent en contact avec votre microscope, ou les
accessoires d´abord enlever celles-ci avec une brosse à poils très doux.
Nettoyez alors les zones salies avec un chiffon doux et non pelucheux. Pour
enlever des empreintes digitales des surfaces optiques il est préférable d´
employer un tissus doux non pelucheux, sur lequel vous aurez appliqué de
l´alcool ou un solvant non gras.

11. Données techniques

Tableau des grossissements
Oculaire/s Objectif Grossissement avec lentille de Barlow

5x 4x 20x 40x
5x 10x 50x 100x
5x 40x 200x 400x
16x 4x 64x 128x
16x 10x 160x 320x
16x 40x 640x 1280x

Note.
La gomme arabique fournie (Fig. B 24) est employée pour fabriquer des
préparation de manière permanente. Ajoutez la gomme à la place de l´eau
distillée de façon à fixer définitivement la préparation sur son support en
verre.

Attention!

Les oeufs des crevettes ne sont pas adaptés à la

consommation humaine

Il est conseillé de débrancher le cordon si vous ne devez pas vous

servir de votre microscope pour une longue période.

- 12 -

12. Conformité CE

Meade Instruments Europe GmbH & Co KG, 46414 Rhede/Westf., Gutenbergstr.
2, Allemagne, certifie que ce produit est conforme normes européennes
suivantes:

EN 61558-2-6:1997
EN 61558-11997 +A1

Description du produit : <Microscope biologique>
Modèle: DuoLux

Rhede, Juillet 2007

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG

Helmut Ebbert
président-direkteur général

13. Service - Garantie

La période de garantie est de 2 ans et débute le jour de l’achat.

Veuillez conserver le ticket de caisse comme preuve de l'achat. Pendant la
période de garantie, les appareils défectueux sont acceptés sur place par votre
vendeur spécialisé et seront éventuellement envoyés. Vous obtenez en échange
et gratuitement un appareil nouveau ou réparé. Lorsque la période de garantie
a pris fin, vous avez également la possibilité d’apporter un appareil défectueux
pour le faire réparer. Lorsque la période de garantie s’est écoulée, les
réparations éventuelles sont toutefois payantes.

Votre revendeur:

Nom: ....................................................................................................................

Code postal / Ville: ..............................................................................................

Rue: ......................................................................................................................

Téléphone:............................................................................................................

Date d´achat: ........................................................................................................

Signature: ............................................................................................................

Notes

Important :
Veillez à ce que l’appareil que vous rendez soit emballé
précautionneusement dans son emballage d’origine pour éviter des
dommages au cours du transport ! Veuillez y ajouter le ticket de caisse (ou
une copie). Vos droits légaux ne sont pas restreints par cette garantie.

- 13 -

- 14 -

Componentes (Fig. A)

B

Ocular WF16x de gran campo

C

Ocular WF5x de gran campo

d

Lente Barlow

E

Tubo portaoculares

F

Cabezal monocular del microscopio

g

Iluminación por LED (incidente)

H

Mando de enfoque

i

Regulador de intensidad de luz/
interruptor On/Off

j

Alimentación de corriente

1)

Hueco para oculares

1!

Combinación de filtros de colores y
rueda del diafragma

1@

Iluminación por LED (transmitida)

1#

Platina

1$

Pinzas

1%

Objetivos

1^

Revólver portaobjetivos

1&

Tornillo de ajuste del cabezal

Componentes (Fig. B)

1*

Cuchilla cilíndrica para la prepara­ción de muestras (Microtomo)

1(

Pinzas

2)

Pipeta

2!

Agujas para preparaciones

2@

Recipiente para la incubación

2#

Levadura

2$

“Gum media”

2%

Sal marina

2^

Huevos de gamba

2&

Caja con 5 muestras preparadas,
5 portas y 5 cubres en blanco

2*

Adaptador de corriente

2(

Carro móvil (opcional)

3)

Tornillo regulador de altura máxima
de platina

3!

Ajuste longitudinal

3@

Ajuste transversal

1. General/Situación

Antes de comenzar a utilizar su microscopio, elija una ubicación adecuada.
Asegúrese que descansa sobre una superficie estable libre de vibraciones.
La utilización de la iluminación eléctrica requiere una conexión (220-230V). (Por
razones de seguridad, utilice sólo el adaptador de corriente suministrado. Otros
adaptadores pueden no cumplir con las especificaciones técnicas. No nos
hacemos responsables de ningún daño causado por la utilización de otros
adaptadores).

2. Iluminación por LED

El microscopio tiene dos unidades independientes de iluminación regulables
que se controlan mediante potenciómetros (Fig. A 8). La iluminación transmitida
se utiliza para muestras transparentes. Para observar muestras sólidas que no
son transparentes, utilice la iluminación incidente, y para muestras semi­transparentes, utilice simultáneamente la luz incidente y transmitida. Este modo
no es recomendable para muestras transparentes, ya que puede reflejar en la
muestra.

3.

Filtros de combinación de colores y rueda del diafragma

Para ajustar la calidad de observación de muestras transparentes, utilice la
rueda situada bajo la platina del microscopio (Fig. A 11). Dependiendo del color
del filtro seleccionado, se podrán observar mejor los detalles de la muestra. En
observaciones con luz incidente, por ejemplo con muestras transparentes, la luz
transmitida coloreada en combinación con la incidente, mejorarán los detalles
de la imagen. Dependiendo de la apertura del diafragma, utilice una intensidad
de luz adecuada para mejorar el enfoque, contraste y la resolución de los
detalles.

4. Ajustes del microscopio (iluminación transmitida)

Para realizar la primera observación hay que realizar ajustes en el microscopio
(Fig. A 1-5). Primero, afloje el tornillo (Fig. A 17) y gire el cabezal (Fig. A 4) hasta
conseguir una posición adecuada para realizar las observaciones. Ahora mire a
través de los oculares, siempre empezando por el menor aumento. Desplace la
platina del microscopio (Fig. A 13) hacia abajo utilizando el mando de enfoque
(Fig. A 7) y gire el revólver (Fig. A 16) hasta el objetivo de menor aumento (4x).
(Ahora el objetivo de 4x está colocado verticalmente hacia abajo).
Inserte el ocular de 5x (Fig.A 2) dentro de la lente Barlow (Fig. A 3). Asegúrese
que la lente Barlow se encuentra totalmente dentro del tubo portaoculares (Fig.
A 4) y que no sobresalga hacia fuera.

5. Observación

Cuando haya preparado el microscopio con su correspondiente iluminación,
deberá tener en cuenta lo siguiente:

1. Comience todas las sesiones de observación con el menor número de
aumentos (ocular 5x y objetivo 4x). De este modo, es más fácil de realizar el
centrado y enfoque del objeto.

2. Cuanto mayor sea el número de aumentos, mayor será la intensidad de luz
necesaria para poder obtener una buena calidad de imagen.

Coloque una muestra bajo el objetivo del microscopio y fíjela con las pinzas
(Fig. A 14).
Importante: La muestra debe estar colocada en el centro de la luz transmitida.
Ahora mire a través del ocular (Fig. A 1/2) y gire el mando de enfoque (Fig. A 7)
cuidadosamente hasta que observe la imagen enfocada. Utilice el
potenciómetro (Fig. A 8) para regular la intensidad de la luz transmitida y poder
observar los detalles de la muestra adecuadamente. Puede obtener mayores
aumentos desplazando la lente Barlow (Fig. A 3) cuidadosamente fuera del tubo
portaocular (Fig. A 4). Cuando la lente Barlow está casi fuera, el aumento es casi
el doble.
Para conseguir mayores aumentos, utilice el ocular de 16x (Fig. A 1) y luego gire
el revolver (Fig. A 16) a un mayor objetivo (10x/40x).

6. Observación de muestras – Características y

preparación

6.1 Condiciones

Con este microscopio que presenta luz incidente y transmitida se pueden
realizar observaciones con muestras transparentes y opacas.
Si se observan muestras opacas; como pequeños animales, partes de plantas,
tejidos, piedras, etc; la luz incidente (desde arriba) es reflejada sobre la muestra
y pasa a través del objetivo y ocular, donde la imagen es aumentada, y nos llega
hasta al ojo.
Si se realizan observaciones con muestras transparentes, la luz transmitida
(desde abajo) atraviesa la muestra, el objetivo y el ocular hasta llegar al ojo.
Muchos de los microorganismos del agua, componentes de plantas y pequeñas
partes de animales, que por naturaleza tienen la característica de ser
transparentes, no hacen falta prepararlos antes de la observación; mientras que
otros deben prepararse según corresponda. En el caso de tener que convertir
muestras opacas en trasparentes hay que realizar un pretratamiento o la
inyección de sustancias (fluidos) adecuadas transparentes o se recortan
láminas extremadamente finas de los mismos (manualmente o con un
microtomo) para observarlas a continuación.

6.2 Preparación de cultivos

Como ya hemos mencionado antes, en primer lugar es necesario obtener
segmentos del objeto a observar lo más finos posible. Para obtener resultados
óptimos, necesitaremos un poco de cera o parafina. Si el equipo del
microscopio no incluye este tipo de material, puede utilizar una vela normal.
Introduzca la cera en un recipiente y caliéntelo con una llama. Ahora sumerja el
objeto varias veces en la cera ya fundida y después, espere a que la cera se
seque y se endurezca. Utilice un microtomo (Fig. B 18), un cuchillo/escalpelo
(¡¡tenga cuidado!!) o cualquier instrumento cortante adecuado para obtener
láminas lo más finas posible del objeto que está recubierto con la cera. Por
último, coloque estas láminas del objeto sobre el portaobjetos y tápelos con un
cubreobjetos.

6.3 Elaboración de un cultivo propio

Coloque el objeto que vaya a observar en un portaobjetos de vidrio y utilice una
pipeta (Fig. B 20) para verter una gota de agua destilada sobre dicho objeto (Fig.

Nota importante:
Estas instrucciones incluyen una página desplegable al principio y otra
final con figuras numeradas. Esto hace que las instrucciones sean más
facil de entender. Todas las figuras numeradas con el prefijo A hacen
referencia a las figuras del primer desplegable y las del prefijo B a las que
se encuentran en el desplegable del final.

Índice Página

1. General/Situación 14

2. Iluminación por LED 14

3. Filtros de combinación de colores y
rueda del diafragma 14

4. Ajustes del microscopio (iluminación transmitida) 14

5. Observación 14

6. Observación de muestras –

Características y preparación 14

7. Ajustes del microscopio (luz incidente) 15

8. Experimentos (luz transmitida) 15

9. Accesorios opcionales 15

10. Cuidados y mantenimiento 16

11. Datos técnicos 16

12. Declaración de conformidad con la UE 16

13. Garantía 16

Nota:
Antes de cambiar de objetivo, siempre desplace la platina del microsco­pio hacia abajo. Esto evita posibles daños.

Nota Importante:
Mayores aumentos no implican mejores resultados. Esto depende de la
muestra.

Tenga en cuenta:
Al cambiar el nivel de ampliación (cambio de ocular o de objetivo o
extracción de lente Barlow) deberá volver a utilizar el mando de enfoque
(Fig. A 7) para recuperar la nitidez de la imagen. Sea cuidadoso al realizar
el ajuste. Si eleva la platina del microscopio con demasiada rapidez, el
objetivo y el portaobjetos pueden entrar en contacto y sufrir daños.

- 15 -

B I). A continuación, coloque un cubreobjetos en sentido perpendicular al borde
de la gota de agua, de modo que éste transcurra a lo largo del borde del
cubreobjetos (Fig. B II). Ahora baje lentamente el cubreobjetos sobre la gota de
agua.

7. Ajustes del microscopio (luz incidente)

Para iluminar correctamente cualquier muestra, usted puede regular la
intensidad de luz incidente y transmitida a la vez o individualmente. Los
mejores resultados utilizando el modo de luz incidente se consiguen
combinando el ocular de 5x y el objetivo de 4x. Cualquier otra combinación
incrementa los aumentos, pero reduce el campo visual.

8. Experimentos (luz transmitida)

Una vez que se haya familiarizado con su microscopio podrá realizar los
siguientes experimentos:

8.1 Impresiones de periódicos

Objetos:

1. Pequeño pedazo de papel de periódico que contenga partes de una
ilustración y algunas letras.

2. Un pedazo de papel similar al anterior procedente de una revista.

Para poder observar las letras y las imágenes, elabore de cada objeto un
cultivo limitado temporalmente.
Ajuste su microscopio al menor aumento y utilice el cultivo elaborado con el
periódico. Las letras se verán deshilachadas y rasgadas, porque el periódico se
imprime sobre papel bruto de baja calidad. Sin embargo, las letras de las
revistas se observarán lisas y continuas.
La imagen del periódico se verá como un conjunto de muchos puntos
pequeños, que aparecerán algo sucios; mientras que los puntos de la imagen
de la revista (puntos de trama) serán mucho más nítidos.

8.2 Fibras textiles

Objetos y accesorios:

1. Hilos de diversos tejidos: algodón, lino, lana, seda, rayón, nylon, etc.

2. Dos agujas.

Coloque cada hilo en un portaobjetos de vidrio y únalos con ayuda de dos
agujas. Humedezca los hilos y cúbralos con un cubreobjetos. A continuación,
ajuste el microscopio al menor aumento.

- Las fibras de algodón

son de origen vegetal y se ven a través del microscopio
como una banda plana y retorcida. Las fibras son más gruesas y redondas en
los bordes que en el centro.
Las fibras de algodón parecen tubitos largos y contraídos.

- Las fibras de lino

también tienen origen vegetal, son redondas y transcurren en
línea recta. Brillan como la seda y muestran numerosos abultamientos en el
filamento de la fibra.

- La seda

es de origen animal y consta de una cantidad masiva de fibras de
pequeño diámetro, lo que las diferencia de las fibras vegetales huecas. Cada
fibra es lisa y homogénea, y tiene el aspecto de un pequeño bastoncillo de
vidrio.

- Las fibras de lana

son de origen animal y la superficie consta de cápsulas
solapadas que aparecen discontinuas y onduladas.
Si es posible, compare las fibras de algodón de diversos tejidos y observe el
diferente aspecto que éstas presentan. Los expertos pueden deducir a partir
de este hecho, el país de origen del tejido.

- El rayón

tiene un origen sintético y se fabrica mediante un largo proceso
químico. Todas las fibras muestran líneas duras y oscuras sobre una
superficie lisa y brillante. Las fibras se rizan después de secarse en las mismas
condiciones. Observe las similitudes y las diferencias.

8.3 ¿Cómo se desarrolla el moho en el pan?

Objeto:

Un pedazo de pan duro.
Las esporas de los hongos, los cuales crecen en nuestro pan, se encuentran por
toda la atmósfera.
Coloque el pan en un portaobjetos y pulverice un poco de agua por encima.
Simplemente humedezca el pan, no lo empape.
Introduzca el conjunto en un recipiente con cierre de rosca y guárdelo en un
armario en el que entre poca luz y la temperatura sea templada. En muy poco
tiempo aparecerá el moho en el pan. Observe el pan todos los días.
En la primera fase del moho, aparecerá una pelusa blanca y brillante. Colóquelo
en un portaobjetos para observarlo. El material está representado por una masa
de hilos entrelazados que forman en conjunto el cuerpo del hongo. Cada hilo es
una hifa, y todo el conjunto recibe el nombre de Micelio.
Poco después aparecerán algunos rizoides que unen el hongo del moho con el
pan, y de este modo obtienen agua y nutrientes que permiten que el micelio
pueda seguir creciendo. Los rizoides irán adoptando un color marrón a medida
que pase más tiempo.
En sentido vertical a este grupo crecen hifas (tallos largos y delgados), que
terminan en una diminuta esfera blanca. Este tallo recibe el nombre de
esporangióforo (portador de la cápsula de la espora), mientras que la esfera es

un esporangium o una cápsula de esporas. Poco después estas esferas
adoptan un color negro. Además, las esporas que se encuentran en el interior
maduran.
Cuando la cápsula de esporas se abre, las esporas se liberan, pasan al aire y
pueden infectar a otro pan. A simple vista, las cápsulas de esporas se
reconocen como diminutas manchas negras. Están dispersadas en la superficie
del moho y con ello, dan su nombre al moho. Pueden ser de color rosa, rojo,
azul o verde.
Usted puede crear cultivos de todos los estadios del moho del pan.

8.4 Gambas de agua salada

Accesorios:

1. Levadura (Fig. B 23)

2. “Gum Media” (Fig. B 24)

3. Sal marina (Fig. B 25)

4. Huevos de gamba (Fig. B 26)

5. Recipiente para la incubación de huevos de gamba (Fig. B 22)

8.4.1 Ciclo vital de las gambas de agua salada

La gamba de agua salada, también conocida por los científicos como “Artimia
Salina”, tiene un peculiar e interesante ciclo vital. Los huevos, producidos por
las hembras, se encuban sin que hayan sido jamás fecundados por una gamba
macho. Todas las gambas que surgen de esos huevos encubados son hembras.
En casos extraordinarios, podrían surgir de estos huevos alguna gamba macho.
Estos machos fecundan los huevos de las hembras y del apareamiento surgen
huevos especiales. Estos huevos, llamados “huevos de invierno“ tienen un
grueso caparazón de protección. Los huevos de invierno son muy resistentes e
incluso siguen vivos cuando se quedan sin agua. Pueden incluso persistir en
este estado “durmiente” entre 5 y 10 años. Los huevos se encuban cuando se
vuelvan a dar las condiciones medioambientales adecuadas. Los huevos
incluidos (Fig. B 26) son de este tipo.

8.4.2 Incubación de las gambas de agua salada

Para incubar las gambas, primero es necesario producir una solución salina que
se corresponda con las condiciones de vida de las gambas. Llene un
recipiente con medio litro de agua de lluvia o de grifo. Deje reposar éste agua
aproximadamente 30 horas. Como durante este período de tiempo el agua se
evapora, es aconsejable rellenar un segundo recipiente y dejarlo reposar 36
horas. Una vez pasado este tiempo, vacíe la mitad de la sal marina que le
adjuntamos (Fig. B 25) en el recipiente y remuévalo hasta que la sal se haya
disuelto. Añada un poco del agua marina que se ha producido, en el recipiente
de incubación de gambas (Fig. B 22). Coloque ahora algunos de los huevos y
cierre la tapa. Coloque la instalación en un lugar iluminado, pero evite exponer
el recipiente a la luz directa del sol. Tendría que estar a una temperatura de
aprox. 25°C. A esta temperatura y tras 2-3 días aproximadamente, la gamba
sale del huevo. Si durante este período de tiempo el agua del recipiente se
evapora, añada agua del segundo recipiente.

8.4.3 Las gambas de agua salada bajo el microscopio

El animal que sale del huevo es conocido bajo el nombre de “Nauplio”. Con
ayuda de la pipeta (Fig. B 20), coloque unas cuantas de esas larvas en un
portaobjetos de vidrio y observe. La larva se desplaza por la solución salina con
ayuda de sus protuberancias capilares. Saque diariamente una larva del
recipiente y obsérvela en el microscopio. Si cada día contempla las larvas a
través del microocular y además almacena las imágenes así conseguidas,
obtendrá una documentación fotográfica ininterrumpida y completa del ciclo
vital de las gambas de agua salada. Si lo desea también puede sacar la tapa
superior del recipiente de incubación de gambas y colóquelo entero en la
platina. Dependiendo de la temperatura ambiental, la larva estará ya madura en
un plazo de 6 a 10 semanas. Pronto habrá cultivado una generación completa
de gambas de agua salada que se reproducen constantemente.

8.4.4 Alimentación de las gambas de agua salada

Para mantener con vida las gambas de agua salada, tiene que alimentarlas de
vez en cuando. Esto tiene que hacerse con mucho cuidado, porque en caso de
sobrealimentación, el agua se pudre y nuestra población de gambas se
envenena. La alimentación se efectúa preferentemente con levadura seca en
polvo (Fig. B 23). De a las gambas un poco de esa levadura cada dos días. Si el
agua del recipiente de incubación se pone oscura, es que se está pudriendo. En
ese caso, saque las gambas inmediatamente del agua y métalas en otra
solución salina recién hecha.

9. Accesorios opcionales

Como accesorio opcional para el Bresser BioDiscover hay disponible un carro
móvil (Fig. B 29). Extraiga las pinzas para poderlo instalar (Fig. A 14). Utilice el
tonillo (Fig. B 30) para sujetar el carro móvil a la platina del microscopio. Utilice
los tornillos de ajuste (Fig. B 31+32) para ajustar la muestra longitudinalmente
(Fig. B 31) y transversalmente (Fig. B 32).

Nota:
El “Gum media” proporcionado (Fig. B 24) se utiliza para fabricar
preparados permanentes. Use éste en vez de agua destilada. El “Gum
media” se endurece, por lo que el objeto se fija de forma permanente en
el portaobjetos.

Atención:

¡Ni los huevos de gamba ni las gambas en sí son aptas para el consumo!

- 16 -

10. Cuidados y mantenimiento

Su microscopio es un dispositivo óptico de alta calidad. Por lo tanto, evite que
entre en contacto con polvo o humedad.
No toque ninguna superficie óptica con los dedos.
Si a pesar de todo, el microscopio o los accesorios tienen rastros de polvo o
humedad, retírelos con un cepillo suave.
A continuación, limpie la superficie afectada con un paño suave y sin desgastar.
Para limpiar las huellas de dedos de las superficies ópticas, utilice un paño
suave y sin desgastar ligeramente humedecido en alcohol.
Después de terminar de utilizar el microscopio y sus accesorios, debe volver a
colocarlos en sus correspondientes fundas.

Recuerde: Un buen mantenimiento y cuidado del microscopio conserva su
calidad óptica durante años, y por lo tanto, mantiene su valor.

11. Datos técnicos

Tabla de aumentos
Ocular Objetivo Aumento Con lente Barlow

5x 4x 20x 40x
5x 10x 50x 100x
5x 40x 200x 400x
16x 4x 64x 128x
16x 10x 160x 320x
16x 40x 640x 1280x

12. Declaración de conformidad con la UE

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG, con sede en 46414 Rhede/Westf.,
Gutenbergstr. 2, Alemania, declara que este producto está conforme con las
Directivas de la UE enumeradas a continuación:

EN 61558-2-6:1997
EN 61558-1: 1997 +A1

Descripción del producto: Biological-/ Stereo-type microscope
Modelo/Denominación: BRESSER BioDiscover

Rhede, Julio 2007

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG

Helmut Ebbert
Gerente

13. Garantía

El período de garantía es de 2 años y comienza el día de adquisición del
producto. Así pues, deberá guardar el ticket de compra como justificante.
Durante este período de garantía su proveedor recogerá in situ el equipo
defectuoso y, en su caso, lo enviará al servicio de reparación. A continuación,
usted recibirá un equipo nuevo o reparado de forma totalmente gratuita. Una
vez transcurrido el período de garantía seguirá teniendo la posibilidad de
devolver un equipo defectuoso para proceder a su reparación. La única
diferencia es que a partir de este momento usted será el que deba hacerse
cargo de los gastos que ello implique.

Su proveedor:

Nombre:................................................................................................................

C.P./Localidad: ....................................................................................................

Calle: ....................................................................................................................

Teléfono: ..............................................................................................................

Fecha de compra: ................................................................................................

Firma: ..................................................................................................................

Importante:
Empaquete el equipo con cuidado y en su embalaje original para evitar
que se produzcan desperfectos durante el transporte. No olvide,
asimismo, incluir el ticket de compra (o una copia del mismo). Sus
derechos legales no se verán limitados por esta garantía.

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Notizen · Notes · Notas

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Notizen · Notes · Notas

ANL5013000MSP0409BRESSER

Meade Instruments Europe GmbH & Co. KG

Gutenbergstr. 2 · DE-46414 Rhede · Germany

www.bresser.de · [e-mail]

Technische Änderungen und Irrtümer vorbehalten

Reservation of technical alterations

Sous réserve d’erreurs et de modifications techniques

Queda reservada la posibilidad de incluir modificaciones o de que el texto contenga errores.